تأثیر طیف‌های نوری مختلف بر کیفیت و ویژگی‌های مورفولوژیکی و فتوسنتزی گل آنتوریوم (Anthurium andraeanum) در شرایط انبار سرد

علوم باغبانی

مقاله 2، دوره 35، شماره 1 - شماره پیاپی 49، خرداد 1400، صفحه 13-24   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhs.2021.60521.0

نویسندگان

زهرا فلاحی؛ ساسان علی نیائی فرد^* ؛ مصطفی عرب؛ شیرین دیانتی دیلمی

گروه باغبانی، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، تهران، ایران

چکیده

نگهداری گیاهان گرمسیری ازجمله گل شاخه بریده­ی آنتوریوم در دوره پس از برداشت در دمای زیر 12 درجه سانتی­گراد منجر به ایجاد آسیب سرمازدگی، کاهش کیفیت و عمر گلجایی می­گردد. استفاده از روشی عملی جهت کاهش میزان خسارت سرمازدگی در گل شاخه بریده آنتوریوم ضروری می­باشد. در پژوهش حاضر تاثیر طیف­های مختلف نوری (آبی، تاریکی، سفید، قرمز، ترکیب آبی-قرمز) بر ویژگی­های مورفولوژیکی و فتوسنتزی و عمر گلجایی گل شاخه بریده آنتوریوم در دمای 4 درجه سانتی­گراد مورد بررسی قرار گرفت. پژوهش به‌صورت فاکتوریل در شش تکرار بر پایه طرح کاملاً تصادفی انجام شد. نتایج نشان داد که میزان تغییر زاویه اسپات و کاهش سطح اسپات در دو رقم آنتوریوم (‘Angel’ با اسپات سفید و ‘Calore’ با اسپات قرمزرنگ) در نور قرمز در کم­ترین میزان مشاهده شد. عمر گلجایی تحت تاثیر برهمکنش رقم × طیف نور قرار گرفت و در هر دو رقم بالاترین طول عمر مربوط به نور قرمز بود. اسپات­های گل آنتوریوم فاقد کلروفیل بوده و هیچ فلئورسنسی در سطح اسپات مشاهده نشد؛ اما دمگل عملکرد فتوسیستم II را نشان داد. با توجه به ارزیابی­های انجام شده، فتوسنتز نقشی در حفظ کیفیت و طویل نمودن عمر گلجایی گل شاخه بریده آنتوریوم ندارد. عمر گلجایی رابطه مثبتی با شاخص­های مورفولوژیکی مانند سطح اسپات و رابطه منفی با تغییر زاویه اسپات دارد. درنتیجه استفاده از فناوری­ نوری می‌تواند در زمینه نگهداری از گل­های شاخه بریده در مرحله پس از برداشت، در حین جابه‌جایی و یا نگهداری در سطح خرده‌فروشی مؤثر باشد که در این پژوهش استفاده از نور قرمز جهت حفظ کیفیت و طویل نمودن عمر گلجایی گل شاخه بریده آنتوریوم در شرایط دمای پائین مؤثر شناخته‌شده و توصیه می­شود.

کلیدواژه‌ها

بازارپسندی؛ خسارت سرمازدگی؛ سازه نوری؛ گل شاخه بریده؛ عمر پس از برداشت

مراجع

1- Aghdam M.S., Naderi R., Jannatizadeh A., Sarcheshmeh M.A.A., and Babalar M. 2016. Enhancement of postharvest chilling tolerance of anthurium cut flowers by γ-aminobutyric acid (GABA) treatments. Scientia Horticulturae 198: 52-60.

2- Büchert AM., Gómez Lobato ME., Villarreal NM., Civello PM., and Martínez G.A. 2011. Effect of visible light treatments on postharvest senescence of broccoli (Brassica oleracea L.). Journal of the Science of Food and Agriculture 91(2): 355-361.

3- Charles F., Nilprapruck P., Roux D., and Sallanon H. 2018. Visible light as a new tool to maintain fresh-cut lettuce post-harvest quality. Postharvest Biology and Technology 135: 51-56.

4- Colquhoun TA., Schwieterman ML., Gilbert JL., Jaworski EA., Langer KM., Jones CR., Rushing GV., Hunte TM., Olmstead J., and Clark DG. 2013. Light modulation of volatile organic compounds from petunia flowers and select fruits. Postharvest Biology and Technology 86: 37-44.

5- Criley R., and Paull R. 1993. Postharvest handling of bold tropical cutflowers [recurso electrónico]: Aunthurium, Alpinia, Purpurata, Heliconia and Strelitzia. Journal of Dairy Science 79: 414-420.

6- De Simone S., Oka Y., and Inoue Y. 2000. Effect of light on root hair formation in Arabidopsis thaliana phytochrome-deficient mutants. Journal of Plant Research 113: 63-69.

7- Elibox W., and Umaharan P. 2008. Morphophysiological characteristics associated with vase life of cut flowers of anthurium. HortScience 43: 825-831.

8- Genty B., Briantais J-M., and Baker NR. 1989. The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects 990: 87-92.

9- Higaki T., Rasmussen H., and Carpenter W. 1984. A study of some morphological and anatomical aspects of Anthurium andreanum Lind.Tropical Agriculture and Human Resource. University of Hawaii 12: 49-61. 

10- Kamemoto H., and Kuehnle A.R. 1996. Breeding anthuriums in Hawaii. University of Hawaii press.

11- Kamemoto H., and Nakasone HY. 1963. Evaluation and improvement of anthurium clones. Hawaii Agricultural Experiment Station, University of Hawaii 58: 28.

12- Kami C., Lorrain S., Hornitschek P., and Fankhauser C. 2010. Light-regulated plant growth and development, Current Topics in Developmental Biology 91: 29-66.

13- Ketrodsakul A., Choosung P., Penchaiya P., and Buanong M. Effect of calcium on chilling injury of Anthurium'Angel'cut flower. in III International Conference on Quality Management in Supply Chains of Ornamentals 1131. 2015.

14- Li H., Tang C., Xu Z., Liu X., and Han X. 2012. Effects of different light sources on the growth of non-heading Chinese cabbage (Brassica campestris L.). Journal of Agricultural Science 4: 4:262.

15- Paradiso R., Meinen E., Snel J., Marcelis L., van Ieperen W., and Hogewoning S. 2009. Light use efficiency at different wavelengths in rose plants. International Symposium on High Technology for Greenhouse Systems: GreenSys 2009. 893.

16- Paull R., Chen NJ., and Deputy J. 1985. Physiological changes associated with senescence of cut anthurium flowers. Journal of the American Society for Horticultural Science (USA) 85: 112-125.

17- Paull RE., and Chantrachit T. 2001. Benzyladenine and the vase life of tropical ornamentals. Postharvest Biology and Technology 21: 303-310.

18- Promyou S., Ketsa S., and van Doorn WG. 2012. Salicylic acid alleviates chilling injury in anthurium (Anthurium andraeanum L.) flowers, Postharvest Biology and Technology 64: 104-110.

19- Quail PH. 2002. Phytochrome photosensory signalling networks. Nature Reviews Molecular Cell Biology 3: 85-93.

20- Soleimani Aghdam M., Jannatizadeh A., Sheikh-Assadi M., and Malekzadeh P. 2016. Alleviation of postharvest chilling injury in anthurium cut flowers by salicylic acid treatment. Scientia Horticulturae 202: 70-76.

21- Soleimani Aghdam M., Naderi R., Jannatizadeh A., Sarcheshmeh MAA., and Babalar M. 2016. Enhancement of postharvest chilling tolerance of anthurium cut flowers by γ-aminobutyric acid (GABA) treatments. Scientia Horticulturae 198: 52-60.

22- Soleimani Aghdam M., Naderi R., Sarcheshmeh M.A.A., and Babalar M. 2015. Amelioration of postharvest chilling injury in anthurium cut flowers by γ-aminobutyric acid (GABA) treatments. Postharvest Biology and Technology 110: 70-76.

23- Sun Y., Qian M., Wu R., Niu Q., Teng Y., and Zhang D. 2014. Postharvest pigmentation in red Chinese sand pears (Pyrus pyrifolia Nakai) in response to optimum light and temperature. Postharvest Biology and Technology 91: 64-71.

24- Tarigholeslam M., Kafi M., Nezami A., and Zarghami R. 2016. Effects of chilling stress on physiological and biochemical traits of three hybrid of Corn (Zea mays L) in seedling stage. Journal of Plant Research 29: 540-552.

25- Terfa M., Poudel M., Roro A., Gislerød H., Olsen J., and Torre S. 2012. Light emitting diodes with a high proportion of blue light affects external and internal quality parameters of pot roses differently than the traditional high pressure sodium lamp. VII International Symposium on Light in Horticultural Systems 956. 2012.

26- Woltering EJ., and Paillart MJ. 2018. Effect of cold storage on stomatal functionality, water relations and flower performance in cut roses. Postharvest Biology and Technology 136: 66-73.

28- Yu W., Liu Y., Song L., Jacobs DF., Du X., Ying Y., Shao Q., and Wu J. 2016. Effect of differential light quality on morphology, photosynthesis, and antioxidant enzyme activity in Camptotheca acuminata Seedlings. Journal of Plant Growth Regulation 10:1-13.

29- Zhan L., Hu J., Lim L-T., Pang L., Li Y., and Shao J. 2013. Light exposure inhibiting tissue browning and improving antioxidant capacity of fresh-cut celery (Apium graveolens var. dulce). Food Chemistry 141: 2473-2478.

30- Zhan L., Li Y., Hu J., Pang L., and Fan H. 2012. Browning inhibition and quality preservation of fresh-cut romaine lettuce exposed to high intensity light. Innovative Food Science & Emerging Technologies 14: 70-76.

31- Zhao D., Shen L., Fan B., Liu K., Yu M., Zheng Y., Ding Y., and Sheng J. 2009. Physiological and genetic properties of tomato fruits from 2 cultivars differing in chilling tolerance at cold storage. Journal of Food Science 74: 348-352.