اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات56
تعداد شماره‌ها2,166
تعداد مقالات22,374
تعداد مشاهده مقاله100,734,955
تعداد دریافت فایل اصل مقاله42,033,800
مردانی طلایی, مژگان, رزمجو, جبرائیل, نوری قنبلانی, قدیر, حسن پور, مهدی, ناصری, بهرام. (1404). برهم‌کنش تغذیه‌ای بین کفشدوزک Adalia bipunctata و شته Myzus persicae پرورش‌یافته روی تیمارهای مختلف کودهای معدنی، آلی و زیستی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 39(2), 153-167. doi: 10.22067/jpp.2025.92308.1223
مژگان مردانی طلایی; جبرائیل رزمجو; قدیر نوری قنبلانی; مهدی حسن پور; بهرام ناصری. "برهم‌کنش تغذیه‌ای بین کفشدوزک Adalia bipunctata و شته Myzus persicae پرورش‌یافته روی تیمارهای مختلف کودهای معدنی، آلی و زیستی". سامانه مدیریت نشریات علمی, 39, 2, 1404, 153-167. doi: 10.22067/jpp.2025.92308.1223
مردانی طلایی, مژگان, رزمجو, جبرائیل, نوری قنبلانی, قدیر, حسن پور, مهدی, ناصری, بهرام. (1404). 'برهم‌کنش تغذیه‌ای بین کفشدوزک Adalia bipunctata و شته Myzus persicae پرورش‌یافته روی تیمارهای مختلف کودهای معدنی، آلی و زیستی', سامانه مدیریت نشریات علمی, 39(2), pp. 153-167. doi: 10.22067/jpp.2025.92308.1223
مردانی طلایی, مژگان, رزمجو, جبرائیل, نوری قنبلانی, قدیر, حسن پور, مهدی, ناصری, بهرام. برهم‌کنش تغذیه‌ای بین کفشدوزک Adalia bipunctata و شته Myzus persicae پرورش‌یافته روی تیمارهای مختلف کودهای معدنی، آلی و زیستی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1404; 39(2): 153-167. doi: 10.22067/jpp.2025.92308.1223

برهم‌کنش تغذیه‌ای بین کفشدوزک Adalia bipunctata و شته Myzus persicae پرورش‌یافته روی تیمارهای مختلف کودهای معدنی، آلی و زیستی

پژوهش های حفاظت گیاهان ایران
مقاله 2، دوره 39، شماره 2 - شماره پیاپی 68، تیر 1404، صفحه 153-167    اصل مقاله (1.18 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jpp.2025.92308.1223
نویسندگان
مژگان مردانی طلایی؛ جبرائیل رزمجو* ؛ قدیر نوری قنبلانی؛ مهدی حسن پور؛ بهرام ناصری
گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
چکیده
فلفل‌دلمه (Capsicum annuum L.)، یکی از محصولات جالیزی مهم بومی مکزیک و کشورهای آمریکای جنوبی است. یکی از آفات عمده این گیاه شته‌ سبز هلو ((Sulzer) Myzus persicae) با پراکنش جهانی، پلی‌فاژ و چرخه‌ زندگی هولوسیکلیک می­باشد. از دشمنان طبیعی مهم این گونه شته، کفشدوزک دو نقطه­ای (Adalia bipunctata L.) می­باشد. این پژوهش روی گیاه فلفل‌دلمه رقم California Wonder تغذیه‌شده با تیمار مختلف محرک رشد گیاه در قالب طرح کاملاً تصادفی در شرایط گلخانه با دمای 5 ±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 10 ±65 درصد و نور طبیعی انجام شد. تأثیر محلول­پاشی سولفات روی بر گیاه فلفل‌دلمه­، افزودن کود آلی ورمی­کمپوست 30 درصد و کودهای زیستی Bacillus subtilis، Pseudomonas fluorescens، Glomus intraradices، G. intraradices × B. subtilis و G. intraradices × P. fluorescens به بستر بذری گیاه فلفل‌دلمه­ای مورد مطالعه قرار گرفت. شاخص تغذیه­ای سنین مختلف لاروی و حشره بالغ کفشدوزک شکارگر دو نقطه­ای پرورش­یافته روی شته سبز هلو، در شرایط آزمایشگاهی با دمای 2±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5±65 درصد و دوره­ نوری 16 ساعت روشنایی و هشت ساعت تاریکی مورد بررسی قرار گرفت. بیشترین شاخص ECI لارو کفشدوزک A. bipunctata در تیمارهای B. subtilis، سولفات روی و P. fluorescens و کمترین مقدار آن در ورمی­کمپوست 30 درصد ثبت شد. مقادیر شاخص ECI بالغ شکارگر به‌طور معنی­داری در تیمارهای B. subtilis و P. fluorescens افزایش و در تیمار ورمی­کمپوست 30 درصد کاهش یافت. بیشترین وزن شفیره در تیمار B. subtilis (98/16 میلی‌گرم) و کمترین مقدار آن در تیمار ورمی‌کمپوست 30 درصد (32/11 میلی‌گرم) مشاهده شد. نتایج این بررسی نشان داد که تیمار خاک با کودهای زیستی (P. fluorescens و B. subtilis) روی شاخص­های تغذیه­ای کفشدوزک شکارگر تأثیر مثبت و معنی­داری داشت. بنابراین، می‌توان نتیجه گرفت که استفاده از کودهای زیستی برای تیمار خاک گیاه فلفل‌دلمه‌ای می‌تواند به‌‌عنوان مکملی برای برنامه مهار بیولوژیک شته سبز هلو (M. persicae) مورد استفاده قرار گیرد.
کلیدواژه‌ها
Bacillus subtilis؛ کود زیستی؛ شاخص‌های تغذیه‌ای؛ Pseudomonas fluorescens؛ سولفات روی
مراجع
  1. Ali, A.M., Mohamed, D.S., Shaurub, E.H., & Elsayed, A.M. (2017). Antifeedant activity and some biochemical effects of garlic and lemon essential oils on Spodoptera littoralis (Boisduval) (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of Entomology and Zoology Studies, 5, 1476-1482.
  2. Alizamani, T., Shakarami, J., Mardani-Talaee, M., Zibaee, A., & Serrão, J.E. (2020). Direct interaction between micronutrients and bell pepper (Capsicum annum) to affect fitness of Myzus persicae (Sulzer). Journal of Plant Protection Research, 60, 253-262. https://doi.org/10.24425/jppr.2020.133319.
  3. Alloway, B.J. (2008). Zinc in soils and crop nutrition. International Zinc Association and International Fertilizer Association, 16, 135.
  4. Arancon, N.Q., Edwards, C.A., Yardim, E.N., Oliver, T.J., Byrne, R.J., & Keeney, G. (2007). Suppression of two-spotted spider mite (Tetranychus urticae), mealy bug (Pseudococcus sp) and aphid (Myzus persicae) populations and damage by vermicomposts. Crop Protection, 26(1), 29-39. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2006.03.013.
  5. Barratt, B.I.P., Howarth, F.G., Withers, T.M., Kean, J.M., & Ridley, G.S. (2010). Progress in risk assessment for classical biological control. Biological Control, 52(3), 245-254. https://doi.org/1016/j.biocontrol.2009.02.012.
  6. Bashan, Y., & Levanony, H. (1990). Current status of Azospirillum inoculation technology: Azospirillum as achallenge for agriculture. Candian Journal of Microbiology, 36, 591-608. https://doi.org/10.1139/m90-105.
  7. Biere, A., & Goverse, A. (2016). Plant-mediated systemic interactions between pathogens, parasitic nematodes, and herbivores above-and belowground. Annual Review of Phytopathology, 54, 499-527.
  8. Chaoui, H., Edwards, C.A., Brickner, A., Lee, S.S., & Arancon, N.Q. (2002). Suppression of the plant diseases, Pythium (damping-off), Rhizoctonia (root rot) and Verticillium (wilt) by vermicomposts. In Brighton Crop Protection Conference Pests and Diseases, 2, 711-716.
  9. Chavez-Mendoza, C., Sanchez, C., Munoz Marquez, E., Sida Arreola, J.P., & Flores Cordova, M.A. (2015). Bioactive compounds and antioxidant activity in different grafted varieties of bell pepper. Antioxidants, 4(2), 427-446. https://doi.org/ 3390/antiox4020427.
  10. El-Refaie, R.M., Shaurub, E.S.H., Abd-Allah, G.E., Ebeid, A.A., & Abouelnaga, Z.S. (2024). Effect of four host plants on the life history and nutritional indices of Spodoptera Littoralis. International Journal of Tropical Insect Science 44, 1091–1101.
  11. Enriquez, T., Lievens, V., Nieberding, C.M., & Visser, B. (2022). Pupal size as a proxy for fat content in laboratory-reared and field-collected Drosophila species. Scientific Reports, 12(1), 12855. https://doi.org/10.1038/s41598-022-15325-0.
  12. Fenton, B., Kasprowicz, L., Malloch, G., & Pickup, J. (2010). Reproductive performance of asexual clones of the peach-potato aphid, Myzus persicae, (Homoptera: Aphididae), colonising Scotland in relation to host plant and field ecology. Bulletin of Entomological Research, 100(4), 451–460. https://doi.org/10.1017/S0007485309990447.
  13. Gadhave, K.R., Finch, P., Gibson, T.M., & Gange, A.C. (2016). Plant growth-promoting Bacillus suppress Brevicoryne brassicae field infestation and trigger density-dependent and density-independent natural enemy responses. Journal of Pest Science, 89, 985-992.
  14. Gouda, S., Kerry, R.G., Das, G., Paramithiotis, S., Shin, H.S., & Patra, J.K. (2018). Revitalization of plant growth promoting rhizobacteria for sustainable development in agriculture. Microbiological Research, 206, 131-140. https://doi.org/1016/j.micres.2017.08.016.
  15. Hajek, A.E., & Eilenberg, J. (2018). Natural Enemies: An Introduction to Biological Control. Cambridge University Press. Cambridge, UK, 439 pp. https://doi.org/10.1017/9781107280267.
  16. Hassanvand, M., Shakarami, J., & Mardani-Talaee, M. (2020). Nutrition interaction between different mycorrhizal species and bell pepper,‎ Capsicum annum, and its effects on biological parameters of the green peach‎ aphid, Myzus persicae (Sulzer), under greenhouse conditions‎. Iranian Journal of Plant Protection Science, 50, 289-300. https://doi.org/10.22059/ijpps.2020.285107.1006898. (In Persian)
  17. Heinen, R., Biere, A., Harvey, J.A., & Bezemer, T.M. (2018). Effects of soil organisms on aboveground plant-insect interactions in the field: Patterns, mechanisms and the role of methodology. Frontiers in Ecology and Evolution, 6, 106. https://doi.org/3389/fevo.2018.00106.
  18. Hodek, I., & Honeck, A. (1996). Ecology of Coccinellidae, 1st Ed. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Netherland, 464 pp. http://dx.doi.org/10.1007/978-94-017-1349-8.
  19. Honěk, A., Novák, I., Martinková, Z., Saska, P., Kulfan, J., Holecová, M., Jauschova, T., & Zach, P. (2023). Trophic ecology drives annual variation in abundance of Aphidophagous (Coccinellidae, Coleoptera and Chrysopidae, Neuroptera) and Phytophagous (Noctuidae, Lepidoptera) insects: Evidence from light traps. Annals of the Entomological Society of America, 116(2), 125-140. http://dx.doi.org/1093/aesa/saad002.
  20. Hunter, M.D., & Price, P.W. (1992). Playing chutes and ladders: Heterogeneity and the relative roles of bottom-up and top-down forces in natural communities. Ecology, 73, 724-732.
  21. Hwang, S.Y., Liu, C.H., & Shen, T.C. (2008). Effects of plant nutrient availability and host plant species on the performance of two Pieris butterflies (Lepidoptera: Pieridae). Biochemical Systematics and Ecology, 36(7), 505-513. https://doi.org/10.1016/j.bse.2008.03.001.
  22. Lazarević, J.M., & Perić-Mataruga, V.D. (2003). Nutritive stress effects on growth and digestive physiology of Lymantria dispar Jugoslovenska Medicinska Biohemija, 22(1), 53-59. https://doi.org/10.2298/JMH0301053L
  23. Leuck, D.B., & Perkins, W.D. (1972). A method of estimating fall armyworm progeny reduction when evaluating control achieved by host-plant resistance. Journal of Economic Entomology, 65(2), 482-483. https://doi.org/10.1093/jee/65.2.482.
  24. Mardani-Talaee, M., Gadir Nouri-Ganblani, G., Zibaee, A., Jabraeil Razmjou, J., Hassanpour, M., & Naseri, B. (2022). Effect of nutritional interaction between plant growth stimulants and peach green aphid (Myzus persicae Sulzer) on physiological processes of two-spotted ladybird (Adalia bipunctata). Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture), 45(1), 65-82. https://doi.org/10.22055/PPR.2022.17365. (In Persian with English abstract).
  25. Mardani-Talaee, M., Nouri-Ganblani, G., Razmjou, J., Hassanpour, M., Naseri, B., & Asgharzadeh, A. (2016 a). Effects of chemical, organic and bio-fertilizers on some secondary metabolites in the leaves of bell pepper (Capsicum annuum) and their impact on life table parameters of Myzus persicae (Hemiptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 109(3), 1231-1240. https://doi.org/10.1093/jee/tov389.
  26. Mardani‐Talaee, M., Nouri‐Ganblani, G., Razmjou, J., Hassanpour, M., Vivekanandhan, P., & Naseri, B. (2024). Bottom‐up effects of various plant growth promoting treatments on fitness parameters of Hippodamia variegata. Journal of Basic Microbiology, 65(3), e2400486. https://doi.org/10.1002/jobm.202400486.
  27. Mardani-Talaee, M., Razmjou, J., Nouri-Ganbalani, G., Hassanpour, M., & Naseri, B. (2017). Impact of chemical, organic and bio-fertilizers application on bell pepper, Capsicum annuum and biological parameters of Myzus persicae (Sulzer)(Hem: Aphididae). Neotropical Entomology, 46, 578-586. https://doi.org/10.1007/s13744-017-0494-2.
  28. Mardani-Talaee, M., Razmjou, J., Nouri-Ganbalani, G., Hassanpour, M., & Naseri, B. (2025). Bottom-up effects of different fertilizer on changes in the two sex life table of the ladybug beetle Adalia bipunctata Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture), 48(1), 33-53. https://doi.org/10.22055/PPR.2025.48593.1781. (In Persian with English abstract)
  29. Mardani-Talaee, M., Zibaee, A., Nouri-Ganbalani, G., Rahimi, V., & Tajmiri, P. (2015). Effect of vermicompost on nutrition and intermediary metabolism of Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata (Say) (Coleoptera: Chrysomelidae). Archives of Phytopathology and Plant Protection, 48(8), 623-645. https://doi.org/1080/03235408.2015.1091154.
  30. Mardani-Talaee, M., Zibaee, A., Nouri-Ganblani, G., & Razmjou, J. (2016b). Chemical and organic fertilizers affect physiological performance and antioxidant activities in Myzus persicae (Hemiptera: Aphididae). Invertebrate Survival Journal, 13(1), 122-133. https://doi.org/10.25431/1824-307X/isj.v13i1.122-133.
  31. Mattson, W.J. (1980). Herbivory in relation to plant nitrogen content. Annual Review of Ecology and Systematics, 11, 119-161. https://doi.org/1146/annurev.es.11.110180.001003.
  32. Megali, L., Schlau, B., & Rasmann, S. (2015). Soil microbial inoculation increases corn yield and insect attack. Agronomy for Sustainable Development, 35, 1511-1519. https://doi.org/10.1007/s13593-015-0323-0.
  33. Mercer, N.H., & Obrycki, J.J. (2021). Impacts of larval diet on pre-imaginal development, survival and adult size of six species of Coccinellidae (Coleoptera). Journal of the Kansas Entomological Society, 93(3), 256-261. https://doi.org/10.2317/0022-8567-93.3.256
  34. Moon, D.C., Barnouti, J., & Younginger, B. (2013). Context‐dependent effects of mycorrhizae on herbivore density and parasitism in a tritrophic coastal study system. Ecological Entomology, 38(1), 31-39.
  35. Naeem, M., Aslam, Z., Khaliq, A., Ahmed, J.N., Nawaz, A., & Hussain, M. (2018). Plant growth promoting rhizobacteria reduce aphid population and enhance the productivity of bread wheat. Brazilian Journal of Microbiology, 49(1), 9–14. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2017.10.005.
  36. Nathan, S.S., Chung, P.G., & Murugan, K. (2006). Combined effect of biopesticides on the digestive enzymatic profiles of Cnaphalocrocis medinalis (Guenée) (the rice leaffolder) (Insecta: Lepidoptera: Pyralidae). Ecotoxicology and Environmental Safety, 64(3), 382-389. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2005.04.008 .
  37. Noret, N., Josens, G., Escarré, J., Lefèbvre, C., Panichelli, S., & Meerts, P. (2007). Development of Issoria lathonia (Lepidoptera: Nymphalidae) on zinc‐accumulating and nonaccumulating Viola species (Violaceae). Environmental Toxicology and Chemistry: An International Journal, 26(3), 565-571. https://doi.org/1897/06-413R.1.
  38. Obrycki, J.J., & Kring, T.J. (1998). Predaceous Coccinellidae in biological control. Annual Review of Entomology, 43(1), 295-321. https://doi.org/1146/annurev.ento.43.1.295.
  39. Priyanka, S.L., Jeyarani, S., Sathiah, N., Mohankumar, S., & Nakkeeran, S. (2023). Influence of host egg age on parasitic potential of the entomophagous, Telenomus remus Nixon (Hymenoptera: Scelionidae) against the Fall armyworm, Spodoptera frugiperda (JE Smith) (Lepidoptera: Noctuidae) and investigations on the developmental biology and ultrastructure of egg parasitoid immature stages. Egyptian Journal of Biological Pest Control, 33(1), 26. http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.
  40. Ramadan, M.M., Awadalla, S.S., Abdel-Hady, A.A., & Hassan, M.A. (2022). Effect of essential and factitious foods and their mixing on developmental performance and reproductive fitness of the ladybeetle, Hippodamia variegata. Journal of Plant Protection and Pathology, 13(3), 63-68. https://doi.org/21608/jppp.2022.130670.1063.
  41. Razmjou, J., Mohammadi, M., & Hassanpour, M. (2011). Effect of vermicompost and cucumber cultivar on population growth attributes of the melon aphid (Hemiptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 104(4), 1379-1383. https://doi.org/10.1603/EC10120.
  42. Ricupero, M., Dai, C., Siscaro, G., Russo, A., Biondi, A., & Zappalà, L. (2020). Potential diet regimens for laboratory rearing of the harlequin ladybird. BioControl, 65, 583-592. https://doi.org/1007/s10526-020-10021-2.
  43. Rubiya, R., Murugan, M., Shanthi, M., Krishnamoorthi, V., & Vellaikumar, S. (2019). Comparative feeding and digestive performance of four lepidopteran species of Larva on onion, Allium cepavar aggregatum as a host plant. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 8(6), 1692-1702. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2019.806.202
  44. Saravanakumar, D., Lavanya, N., Muthumeena, B., Raguchander, T., Suresh, S., & Samiyappan, R. (2008). Pseudomonas fluorescens enhances resistance and natural enemy population in rice plants against leaffolder pest. Journal of Applied Entomology, 132(6), 469-479. https://doi.org/10.1111/j.1439-0418.2008.01278.x.
  45. Sarkar, S.C., Milroy, S.P., & Xu, W. (2022). Development and reproduction of a native generalist predator, Coccinella transversalis (Coleoptera: Coccinellidae), on the tomato potato psyllid, Bactericera cockerelli, with a greenhouse assay of biocontrol potential. Biological Control, 176, 105108. https://doi.org/1016/j.biocontrol.2022.105108.
  46. Schausberger, P., Peneder, S., Jürschik, S., & Hoffmann, D. (2012). Mycorrhiza changes plant volatiles to attract spider mite enemies. Functional Ecology, 26(2), 441-449. https://doi.org/10.1111/j.1365-2435.2011.01947.x.
  47. Scriber, J.M. (1993). Absence of behavioral induction in oviposition preference of Papilio glaucus (Lepidoptera: Papilionidae). The Great Lakes Entomologist, 26(2), 1. https://doi.org/22543/0090-0222.1811.
  48. Scriber, J.M., & Slansky, F.J. (1981). The nutritional ecology of immature insects. Annual Review of Entomology, 26, 183-211. https://doi.org/1146/annurev.en.26.010181.001151.
  49. Singh, M., Pande, H., Naik, J.H., Goswami, D., & Kaushal, B.R. (2019). Nutritional indices of Helicoverpa armigera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae) on three different host plants. Indian Journal of Agricultural Research, 53(5), 536-541. https://doi.org/18805/IJARe.A-5272.
  50. Spiegel-Roy, P., & Goldschmidt, E. (2008). Biology of citrus. Cambridge University Press, Cambridge, UK, 230 pp.
  51. Stella de Freitas, T.F., Stout, M.J., & Sant'Ana, J. (2019). Effects of exogenous methyl jasmonate and salicylic acid on rice resistance to Oebalus pugnax. Pest Management Science, 75(3), 744-752. https://doi.org/1002/ps.5174.
  52. Sun, Y.X., Hao, Y.N., Riddick, E.W., & Liu, T.X. (2017). Factitious prey and artificial diets for predatory lady beetles: Current situation, obstacles, and approaches for improvement: A review. Biocontrol Science and Technology, 27(5), 601-619. https://doi.org/10.1080/09583157.2017.1324112.
  53. Tsai, C.J., Harding, S.A., Tschaplinski, T.J., Lindroth, R.L., & Yuan, Y. (2006). Genome‐wide analysis of the structural genes regulating defense phenylpropanoid metabolism in Populus. New Phytologist, 172(1), 47-62. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2006.01798.x.
  54. Valenzuela-Soto, J.H., Estrada-Hernández, M.G., Ibarra-Laclette, E., & DélanoFrier, J.P. (2010). Inoculation of tomato plants (Solanum lycopersicum) with growth-promoting Bacillus subtilis retards whitefly Bemisia tabaci Planta, 231, 397–410. https://doi.org/10.1007/s00425-009-1061-9.
  55. Waldbauer, G.P. (1968). The Consumption and Utilization of Food by Insects. In Advances in Insect Physiology, 5, 229-288. Academic Press. https://doi.org/10.1016/S0065-2806(08)60230-1.
  56. Wittman, J.T., & Aukema, B.H. (2019). Foliage type and deprivation alters the movement behavior of late instar European gypsy moth Lymantria dispar (Lepidoptera: Erebidae). Journal of Insect Behavior, 32, 24-37. https://doi.org/10.1007/s10905-019-09711-2.
  57. Yu Qin, Y.Q., Wang Fang, W.F., Zhang RunXiang, Z.R., Guo GuiMing, G.G., Fan RenJun, F.R., & Hao Chi, H.C. (2016). Effects of pupal weight on the fecundity and longevity of adults and the larval development of the next generation in Grapholitha molesta (Lepidoptera: Tortricidae). Acta Entomologica Sinica, 59, 985–

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,610
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 688


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب