بررسی قابلیت آندروژنز و کالوس‌زایی در چهار رقم گوجه‌فرنگی (Lycopersicon esculentum Mill) به‌وسیله کشت بساک

علوم باغبانی

مقاله 14، دوره 29، شماره 3، آذر 1394، صفحه 443-450   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v0i0.36374

نویسندگان

رسول نجیب^{* 1}؛ محمد فارسی¹؛ امین میرشمسی کاخکی¹؛ سعید رضا وصال²

¹دانشگاه فردوسی مشهد

²دانشگاه اشترالیای غربی/دانشکاه فردوسی مشهد

چکیده

به منظور بررسی پاسخ به آندروژنز و القاء کالوس از کشت بساک گوجه‌فرنگی، چهار رقم به نام‌های موبیل‌ هلند، بیکر، U. S. Agriseed و خرم انتخاب شدند. جهت تعیین مرحله مناسب توسعه میکروسپور برای کشت بساک بررسی‌های سیتولوژیکی در اندازه‌های مختلف طولی 9/7-2 میلی‌متری جوانه‌های گل انجام شد. برمبنای مطالعات سیتولوژیکی ‌در هر چهار رقم مورد آزمایش، جوانه‌های‌گل با اندازه طولی 9/4-4 میلی‌متر بدلیل داشتن بالاترین فراوانی میکروسپورهای مرحله میوز تا اواسط مرحله تک‌هسته‌ای، جهت کشت انتخاب شدند. جهت پیش‌تیمار از محلول کلشی‌سین 025/0 درصد در 4 درجه سانتی‌گراد به مدت 48 ساعت استفاده شد. سپس بساک‌ها در محیط‌ کشت‌ MS حاوی 2 میلی‌گرم بر لیتر IAA و 1 میلی‌گرم بر لیتر 2ip کشت شدند. روند تغییرات در فراوانی القاء کالوس و ضخامت کالوس‌ها در طی هشت هفته ثبت شد. نتایج حاصل از آزمایش نشان داد که ژنوتیپ‌های مورد مطالعه از نظر فراوانی نسبی القاء کالوس با هم اختلاف معنی‌داری دارند (0001/0 P

کلیدواژه‌ها

القاء‌ کالوس؛ ژنوتیپ؛ هاپلویید

مراجع

1- Chlyah A., Taarji B., and Chlyah H. 2004. Tomato (Lycopersicon esculentum L.): Anther culture and Induction of androgenesis. In: Bajaj Y. (eds), Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 12, pp. 442-457.

2- Doy C.H., and Gresshoff P.M. 1972. Development and differentiation of haploid tomato (Lycopersicon esculentum L.). Planta 107, pp. 161-170.

3- FAO. 2009. FAOSTAT. http://faostat.fao.org

4- Jain S.M., Sopory S.K., and Villeux R.E. (eds). 1997. In vitro haploid production in higher plants. Vol. 5, In: W. L. Summers (ed.) Haploid plantlet production in tomato, pp. 219-231.

5- Panahi M.E.S., Touraev A., Herbele-Bros E. 2009. Induction of embryogenesis in microspores of Tomato (Lycopersicum esculrntum Mill) cv. Microtom. Seed and Plant Production Journal, Vol. 25-2, No. 3, pp 315-328.

6- Sharp W.R., Dougall D.K., and Paddock E.F. 1981. Haploid plantlets and callus from immature pollen grains of Nicotiana and Lycopersicon. The journal of the Torrey Botanical Society 98, pp. 219-222.

7- Summers W.L., Jaramillo J., and Bailey T. 1992. Microspore developmental stage and anther length influence the induction of tomato anther callus. Horticultural Science 27, pp. 838-840.

8- Shamina Z.B., and Dao N. 1996. Tomato anther culture. K. A. Timiryazev Institute of plant physiology, Moscow USSR, pp. 355-370.

9- Segui-Simarro J.M., and Martinez P. 2011. Androgenesis in recalcitrant solanaceous crops (a Review). Plant Cell Reports 30, pp. 765-778.

10- Touraev A., Brian P., and Mohan S. (eds). 2009. Advances in Haploid Production in Higher Plants. Springer Science, pp. 3-7.

11- Zagorska N.A., Shtereva A., and Dimitrov B.D. 1997. Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): I. Influence of genotype on androgenetic ability. Plant Cell Reports 17, pp. 968-973.

12- Zagorska N.A., Shtereva A., and Dimitrov B.D. 1998. Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): II. Factors affecting induction of androgenesis. Plant Cell Reports 18, pp. 312-317.

13- Zagorska N.A., Shtereva A., and Dimitrov B.D. 2004. Induced androgenesis in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): III. Characterization of the regenerants. Plant Cell Reports 22, pp. 449-456.