بررسی ارزش تغذیه‌ای دانه گیاه شورزیست کوشیا (Bassia scoparia) به‌روش برون تنی جهت استفاده در تغذیه نشخوارکنندگان در مناطق خشک و نیمه خشک

پژوهشهای علوم دامی ایران

مقاله 4، دوره 14، شماره 3 - شماره پیاپی 51، مهر 1401، صفحه 345-357   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.2021.70411.1025

نویسندگان

محسن ساری^{* 1}؛ یاسر منجزی²؛ جعفر نباتی³

¹گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، اهواز، ایران

²گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان. ملاثانی، اهواز، ایران

³گروه بقولات، پژوهشکده علوم گیاهی، دانشگاه فردوسی مشهد، ایران

چکیده

تأثیر استفاده از دانه کوشیا بر تخمیر شکمبه‌ای با استفاده از جیره‌های آزمایشی شامل شاهد (بدون دانه کوشیا) و سه جیره حاوی سطوح 10، 20 و 30 درصد دانه کوشیا در ماده خشک جیره، مورد بررسی قرار گرفت. از روش‌های تولید گاز و کشت پیوسته دوجریانه استفاده شد. هشت فرمانتور کشت پیوسته دوجریانه (1320 میلی‌لیتر) در دو دوره مورد استفاده قرار گرفت. با استفاده از دانه کوشیا در جیره، پتانسیل تولید گاز و نیز حجم گاز تولیدی افزایش یافت. انرژی قابل متابولیسم، قابلیت هضم ماده آلی و اسیدهای چرب کوتاه زنجیر با افزایش سطح دانه کوشیا به‌صورت خطی افزایش یافت. با افزایش سطح دانه کوشیا، قابلیت هضم ماده خشک به‌صورت خطی افزایش یافت. قابلیت هضم ماده آلی در جیره‌های حاوی دانه کوشیا تمایل به افزایش داشت. قابلیت هضم پروتئین خام در تیمارهای حاوی 20 و 30 درصد دانه کوشیا در مقایسه با دیگر تیمارها بالاتر بود. غلظت کل اسیدهای چرب فرار با افزایش سطح دانه کوشیا در جیره، به‌صورت خطی افزایش یافت. غلظت نیتروژن آمونیاکی در قبل از خوراک‌دهی، دو ساعت پس از خوراک‌دهی و میانگین غلظت نیتروژن آمونیاکی در زمان‌های مختلف با افزایش دانه کوشیا کاهش یافت. نتایج این آزمایش نشان داد که استفاده از دانه کوشیا تا 30 درصد ماده خشک جیره می‌تواند با تخمیر طبیعی در شکمبه، مورد استفاده حیوان میزبان قرار گیرد و به‌دلیل نیاز آبی کم و قابلیت کشت گیاه در خاک‌های شور، می‌تواند گزینه‌ای مناسب جهت تأمین بخشی از خوراک دام‌های نشخوارکننده در این مناطق باشد. برای جمع‌بندی، مطالعات بیشتری در دام زنده موردنیاز می‌باشد.

کلیدواژه‌ها

ارزش تغذیه‌ای؛ جیره‌های پر کنسانتره؛ خصوصیات تخمیر؛ دانه کوشیا؛ گیاهان شورزیست

مراجع

1. AOAC. (1990). Official Methods of Analysis. 15^th Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA.
2. Basra, A. S., & Basra, R. K. (1997). Mechanisms of environmental stress resistance in plants. Harwood Academic Publishers.
3. Blummel, M., Steingss, H., & Becker, K. (1997). The relationship between in vitro gas production, in vitro microbial biomass yield and 15N incorporation and its implications for the prediction of voluntary feed intake of roughages. British Journal of Nutrition, 77, 911–921. https://doi.org/1016/S0377-8401(97)81628-8.
4. Broderik, G. A., & Kang, J. H. (1980). Automated simultaneous determination of ammonia and total amino acids in ruminal fluid and in vitro Journal of Dairy Science, 63, 64-75. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(80)82888-8.
5. Coxworth, E., Bell, J., & Ashford, R. (1969). Preliminary evaluations of Russian thistle, kochia, and garden atriplex as potential high protein content seed crops for semiarid areas. Canadian Journal of Plant Science, 49, 427-434. https://doi.org/4141/cjps69-071.
6. Danesh Mesgaran, M., & Stern, M. D. (2005). Ruminal and post-ruminal protein disappearance of various feeds originating from Iranian plant varieties determined by the in situ mobile bag technique and alternative methods. Animal Feed Science and Technology, 118, 31–46. https://doi.org/1016/j.anifeedsci.2004.10.009.
7. Dickie, C. W., & James, L. F. (1983). Kochia scoparia poisoning in cattle. Journal of the American Veterinary Medical Association, 183, 765-768.
8. Friesen, L. F., Beckie, H. J., Warwick, S. I., & Van Acker, R. C. (2009). The biology of Canadian weeds. 138. Kochia scoparia (L.) Schrad. Canadian Journal of Plant Science, 89, 141-167. https://doi.org/4141/CJPS08057.
9. Galitzer, S. J., & Oehme, F. W. (1978). Kochia scoparia (L.) Schrad. toxicity in cattle: A literature review. Veterinary and Human Toxicology, 20, 421-423.
10. Getachew, G., Makkar, H. P., & Becker, K. (2000). Effect of polyethylene glycol on in vitro degradability of nitrogen and microbial protein synthesis from tannin-rich browse and herbaceous legumes. British Journal of Nutrition, 84, 73–83. https://doi.org/1017/S0007114500001252.
11. He, Y., Cone, J. W., Hendriks, W. H., & Dijkstra, J. (2020). Relationships between chemical composition and in vitro gas production parameters of maize leaves and stems. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 104, 12–21. https://doi.org/1111/jpn.13221.
12. Hoover, W. H., & Stokes, S. R. (1991). Balancing carbohydrates and proteins for optimumrumen microbial yield. Journal of Dairy Science, 74, 3630-3644. https://doi.org/3168/jds.S0022-0302(91)78553-6.
13. Iraira, S. P., Ruiz De La Torre, J. L., Rodríguez-Prado, M., Calsamiglia, S., Manteca, X., & Ferret, A. (2013). Feed intake, ruminal fermentation, and animal behavior of beef heifers fed forage free diets containing nonforage fiber sources. Journal of Animal Science, 91(8), 3827-3835. https://doi.org/2527/jas.2012-5803.
14. Jami Al Ahmadi, M., & Kafi, M. (2008). Kochia (Kochia scoparia): To be or not to be? In: Crop and Forage Production Using Saline Waters. M. Kafi and M.A. Khan, eds. NAM S & T Centre. Daya Publisher, New Delhi.
15. Kafi, M., Asadi, H., & Ganjeali, A. (2010). Possible utilization of high salinity waters and application of low amounts of water for production of the halophyte Kochia scoparia as alternative fodder in saline agroecosystems. Agricultural Water Management, 97, 139-147. https://doi.org/1016/j.agwat.2009.08.022.
16. Kirkpatrick, J. G., Helman, R. G., Burrows, G. E., Von Tungeln, , Lehenbauer, T., & Tyrl, R. J. (1999). Evaluation of hepatic changes and weight gains in sheep grazing Kochia scoparia. Veterinary and Human Toxicology, 41, 67-70.
17. Lechartier, C., & Peyraud, J. L. (2011). The effects of starch and rapidly degradable dry matter from concentrate on ruminal digestion in dairy cows fed corn silage-based diets with fixed forage proportion. Journal of Dairy Science, 94(5), 2440-2454. https://doi.org/3168/jds.2010-3285.
18. Lopez, S., Dijkstra, J., & France, J. (2000). Prediction of energy supply in ruminants, with emphasis on forages. In: Forage Evaluation in Ruminant Nutrition. D.I. Given, E. Owen, R.F.E. Axford and H.M. Omed, eds. CABI Publishing. Oxon, UK. pp. 63-94. https://doi.org/1079/9780851993447.0063.
19. Makkar, H. P. S. (2005). In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal Feed Science and Technology, 123, 291–302. https://doi.org/1016/j.anifeedsci.2005.06.003.
20. Menke, K. H., Raab, L., Salewski, A., Steingass, H., Fritz, D., & Schneider, W. (1979). The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. Journal of Agricultural Science, 92, 217–222. https://doi.org/1017/S0021859600086305.
21. Menke, K.H., & Steingass, H. (1988). Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Researsh Development, 28, 6-55.
22. Nabati, J., Kafi, M., Nezami, A., Rezvani Moghaddam, P., Masoumi, A., & Zare Mehrjerdi, M. (2011). Investigation of possible production of oil and biomass in biosaline agriculture. Iranian Journal of Field Crops Research, 9(4), 615-622. (In Persian).
23. Oba, M. (2011). Effects of feeding sugars on productivity of lactating dairy cows. Canadian Journal of Animal Science, 91(1), 37-46. https://doi.org/4141/CJAS10069.
24. O'Connor, A., McGee, M., Moloney, A., Boland, T., & O'Kiely, P. (2019). Digestion and nitrogen metabolism in beef cattle and in vitro rumen fermentation of autumn grass differing in fertilizer nitrogen application rate. Grass and Forage Science, 74(3), 535-547. https://doi.org/1111/gfs.12420.
25. Ørskov, E. R., & McDonald, I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science. (Cambridge) 92: 499–503. https://doi.org/1017/S0021859600063048.
26. Qureshi, A. S., Qadir, M., Heydari, N., Turral, H., & Javadi, A. (2007). A review of management strategies for salt-prone land and water resources in Iran. Colombo, Sri Lanka: International Water Management Institute. 30 p. (IWMI Working Paper 125).
27. Rankins, D. L., Smith, G. S., & Hallford, D. (1991b). Serum constituents and metabolic hormones in sheep and cattle fed Kochia scoparia Journal of Animal Science, 69, 2941-2946. https://doi.org/10.2527/1991.6972941x.
28. Rankins, D. L., Smith, G. S., & Hallford, D. (1991a). Altered metabolic hormones impaired nitrogen retention and hepatoxicosis in lambs fed Kochia scoparia Journal of Animal Science, 69, 2932-2940. https://doi.org/10.2527/1991.6972932x.
29. Rezvani Moghaddam, P., & Koocheki, A. (2004). History of research on salt-affected lands of Iran, Present status and future prospects: Halophytic ecosystems. 83-95. In: F.K. Taba, S. Ismail and A. Jaradat, eds.
30. Riasi, A., Danesh Mesgaran, M., Stern, M. D., & Ruiz Moreno, M.J. (2012). Effects of two halophytic plants (kochia and atriplex) on digestibility, fermentation and protein synthesis by Ruminal microbes maintained in continuous culture. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 5, 642–647. https://doi.org/5713/ajas.2011.11256.
31. Riasi, A., Danesh Mesgaran, M., Stern, M. D., & Ruiz Moreno, M. J. (2008). Chemical composition, in situ ruminal degradability and post-ruminal disappearance of dry matter and crude protein from the halophytic plants Kochia scoparia, Atriplex dimorphostegia, Suaeda arcuata and Gamanthus gamacarpus. Animal Feed Science and Technology, 141, 209-219. https://doi.org/1016/j.anifeedsci.2007.06.014.
32. Salehi, M., Kafi, M., & Kiani, A. (2009). Growth analysis of kochia (Kochia scoparia Schrad) irrigated with saline water in summer cropping. Pakistan Journal of Botany, 41, 1861-1870.
33. SAS (2009). SAS User’s Guide: Statistics. SAS Institute Inc., Cary, NC .
34. Satter, L. D., & Slyter, L. L. (1974). Effect of ammonia concentration on rumen microbial protein production in vitro. British Journal of Nutrition, 32, 199–208. https://doi.org/1079/bjn19740073.
35. Spanghero, M., Nikulina, A., & Mason, F. (2018). Use of an in vitro gas production procedure to evaluate rumen slow-release urea products. Animal Feed Science and Technology, 237: 19-26. https://doi.org/1016/j.anifeedsci.2017.12.017.
36. Stern, M. D., & Hoover, H. W. (1990). The dual flow continuous culture system. pp. 17–32 in Proc. ContinuousCulture Fermenters: Frustration or Fermentation. Northwest ADSA-ASAS Regional Meeting, Chazy, NY.
37. Sun, H. X., & Zhou, D.W. (2010). Effect of dietary supplement of seed of a halophyte (Suaeda glauca) on feed and water intake, diet digestibility, animal performance and serum biochemistry in lambs. Livestock Science, 128(1-3): 133-139. https://doi.org/1016/j.livsci.2009.11.012.
38. Sun, X. Q., Wang, Y. P., Wei, R.Y., Chen, B., & Zhao, X. (2020). Effects of replacing starch with three sugars in a concentrate and forage diet on in vitro rumen fermentation, fatty acid composition and related bacteria. Animal Production Science, 60(9), 1173-1182. https://doi.org/1071/AN18287.
39. Thilsted, J., & Hibbs, C. (1989). Kochia (Kochia scoparia) toxicosis in cattle: Results of four experimental grazing trials. Veterinary and Human Toxicology, 31, 34-41.
40. Tripathi, M. K., Chaturvedi, O. H., Karim, S. A., Singh, V. K., & Sisodiya, S. L. (2007). Effect of different levels of concentrate allowances on rumenfluid pH, nutrient digestion, nitrogen retention andgrowth performance of weaner lambs. Small Ruminant Research, 72, 178–186. https://doi.org/1016/j.smallrumres.2006.10.008.
41. Tukey, J. W. (1953). The problem of multiple comparison. Unpublished notes, Princeton Univ., Princeton, NJ. https://www.jstor.org/stable/1558730.
42. Van Soest, P. J. (1994). Nutritional Ecology of the Ruminant. 2 ed. Comstock Publ. Assoc., Ithaca, NY .
43. Whitney, H. M., Sayanova, O., Pickett, J. A., & Napier, J. A. (2004). Isolation and expression pattern of two putative acylACP desaturase cDNAs from Bassia scoparia. Journal of Experimental Botany, 55, 787-789. https://doi.org/10.1093/jxb/erh072.
44. YANG, W. 2017. Factors Affecting Rumen Fermentation Using Batch Culture Technique. Fermentation Processes. InTech. 77-92.