بررسی باززایی مستقیم در بابونه‌های آلمانی (Matricaria chamomilla L.) و شیرازی (Matricaria recutita L.) در شرایط درون شیشه ای

علوم باغبانی

مقاله 7، دوره 29، شماره 4، اسفند 1394، صفحه 601-609   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v29i4.32417

نویسندگان

اسد معصومی اصل؛ آمنه آریایی نژاد؛ مسعود دهداری^*

دانشگاه یاسوج

چکیده

بابونههای آلمانی (Matricaria chamomilla L.) و شیرازی (Matricaria recutita L.) از مهم‌ترین گیاهان دارویی خانواده کاسنی می‌باشند که در صنایع داروسازی، بهداشتی، آرایشی و غذایی استفاده می‌شوند. ریزازدیادی درون شیشه‌ای گیاهان، پتانسیل بالایی جهت تولید داروهای گیاهی، احیاء و حفظ گیاهان، ایجاد تنوع سوماکلونی، تکثیر به صورت صنعتی، تولید متابولیت‌های ثانویه با ارزش و افزایش مواد موثره دارد. در این مطالعه تاثیر هورمون‌های گیاهی NAA، BAP، 2ip، Zeatin و کینتین بر باززایی مستقیم گیاهچه از ریزنمونه‌های برگ، کوتیلدون و ساقه (فاقد گره و دارای گره) بابونه‌های آلمانی و شیرازی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج نشان دادند که در باززایی مستقیم هر دو نوع بابونه بهترین ریزنمونه‌، ساقه دارای گره و کوتیلدون به ترتیب با 75/78 و 75 درصد شاخساره‌زایی بودند. همچنین برترین رقم و ترکیب هورمونی، رقم بابونه شیرازی با ترکیب هورمونی 5/1 میلی‌گرم در لیتر 2-ip به همراه 1/0 میلی‌گرم در لیترNAA در محیط کشت MS بود. تولید ریشه هم تحت‌تاثیر هورمون اکسین (5/0 میلی‌گرم در لیتر IBA) و هم به‌صورت خودبخودی انجام شد. بر اساس نتایج این تحقیق، بابونه پاسخ مناسبی به باززایی مستقیم نشان داد.

کلیدواژه‌ها

ریزازدیادی؛ ریزنمونه؛ ژنوتیپ؛ هورمون

مراجع

Asadi A.A., Vedadi C., Rahimi M., and Naserian B. 2009. Effect of plant growth hormones on root and shoot regeneration in Rose (Morrasia) under in-vitro conditions. Bioscience Research, Vol. 6, No.1, pp 40-45

2-Azadi P., Khosh-Khui M., Beyramizadeh E., and Bagheri H. 2007. Optimization of factors affecting in vitro proliferation and rooting of Rosa hybrida L. cv. ‘Rafaela’. International Journal of Agriculture Research, Vol. 2, pp 626-631.

3-Bagheri A., and Safari M. 2009. Fundamentals of plant tissue culture. Mashad Ferdousi University Press. 406 pp.

4-Benson E.E., Danaher J.E., Pimbley I.M., Anderson C.T., Wake J.E., Daley S., and Adams L.K. 2000. In vitro micropropagation of Primula scotica: a rare Scottish plant. Journal of Biodiversity and Conservation, Vol. 9, pp 711-726.

5-Bicca dode L., Bobrowski V.L., Bollacelbraga E.J., Seixas F.K., and Schuch M.W. 2003. In vitro propagation of Ocimum basilicum L.(Lamiaceae). Acta Scientiarum Biological Sciences, Vol. 25, No. 2, pp 435-437.

6-Cronmiller J.R., Nelson D.K., Salman G., Jackson D.K., Dean R.S., Hsu J.J., and Kim C.H. 1999. Antimicrobial efficacy of endoscopic disinfection procedures: a controlled, multifactorial investigation. Gastrointestinal Endoscopy, 50(2): 152-158.

7-Debener T., and Oyant L.H.S. 2009. Genetic engineering and tissue culture of roses. In Genetics and genomics of Rosaceae, Vol. 6, pp 393-409.

8-Echeverrigaray S., Franco F., Andrade L.B., Biasio S., and Atti-Serafini L. 2000. In vitro shoot regeneration from leaf explants on Roman Chamomile. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Vol. 60, pp 1-4.

9-Fathi G., and Ismailpour B. 2010. Plant growth regulators (principles and applications). Mashhad Jehad-Danshgahi Press. 288 pp.

10-Fouladi Sh., Zakerin A., and Bayat F. 2011. Secondary methabilites of Chamomile (Matricaria chamomilla) under effect of growth regulators. National congress of Agricultural management. Islamic Azad University of Jahrom.

11-Ganbari T., Hosseini B., and Jabbarzade Z. 2011. Assessment the effect of different combinations and concentrations of growth regulators on direct regeneration from shoot tip explants of Salvia scarea L. 12th Iranian Genetic congress. Shahid Beheshti University, Tehran.

12-George E.F., Hall M.A., and Klerk G.J.D. 2008. Plant growth regulator I: Introduction; Auxins, their Analogues and Inhibitors. In plant propagation by Tissue Culture, Vol. 2, pp 175-204.

13-Ghanti K., Kaviroj C.P., Venugopal R.B., Jabeen F.T.Z., and Rao S. 2003. Rapid regeneration of Mentha piperita L. from shoot tip and nodal explants. Indian Journal of Biotechnology, Vol. 3, pp 594-598.

14-Jablonski J.R., and Skoog F. 1954. Cell enlargement and cell division in excised tobacco pith tissue. Physiology Plant Journal, Vol. 7, pp 16-24.

15-Jang H.H., Ann S.H., and Kim C.W. 2008. Use of hydrogen peroxide as an effective disinfectant to Actinobacillus ureae. Process Biochemistry, Vol. 43, pp 225–228.

16-Larson E.L., and Morton H.E. 1991. Disinfection, Sterilisation and Preservation. In Alcohols. Block, S.S. (ed) Philadelphia. pp 191-203.

17-Loyola-vargas V.M., and Va'zquez-flota F. 2006. Plant cell culture protocols. Second edition. Human press. 393 pp

18-Meftahizade H., Moradkhani H., Naseri B., Lotfi M., and Naseri A. 2010. Improved In vitro culture and micropropagation of different Melissa officinalis L. genotypes. Medicinal Plant Research, Vol. 4, No. 3, pp 240-246.

19-Mitra S.K., and Mukherjee K.K. 2001. Direct organogenesis in Indian spinach. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Vol. 67, pp 191-194.

20-Mohapatra A., Rout G.R., and Das P. 2005. Rapid clonal propagation from nodal explants and in vitro flowering of three rose cultivars. Propagation of Ornamental Plants, Vol. 5, pp 219–223.

21-Moradipour E., Hosseini B., Pirzad A.R., and Ghanbari T. 2013. Effect of different explants, genotypes and hormonal combinations on direct regeneration of Matricaria chamomile L. 2nd National Congress on Medicinal Plants, Tehran, Iran.

22-Mohammadi Z., Nasrollahneghad, A.S., and Azizi M. 2010. Study callogenesis, regeneration and cell suspension culture in genotypes of Chamomile medicinal plant. MsC thesis in Plant Breeding. Ilam University.

23-Noroozi Sharaf1 A.R., Gholami M., Hamidoghli Y., and Zakizadeh H. 2012. In Vitro propagation of primrose (Primula Acaulis L.), via shoot tip explants. Agricultural Biotechnology, Vol. 10, No. 2, pp 35-41.

24-Omidbeygi R. 2011. Production and processing of medicinal plants. 3rd volume, 6th edition, Astane-ghods Razavi Press, 397 pp.

25-Pati P.K., Rath S.P., Sharma M., Sood A., and Ahuja P.S. 2006. In vitro propagation of rose- a review. Biotechnology Advances Journal, Vol. 24, No. 1, pp 94-114.

26-Rout G.R., Mohapatra A., and Jain S.M. 2006. Tissue culture of ornamental pot plant: A critical review on present scenario and future prospects. Biotechnology Advances, Vol. 24, No. 6, pp 531-560.

27-Sana B., Ghosh D., Saha M., and Mukherjee J. 2006. Purification and characterization of a salt, solvent, detergent and bleach tolerant protease from a new gamma-proteobacterium isolated from the marine environment of the Sundarbans. Process Biochemistry, Vol. 41, pp 208–215.

28-Sarwar S., Zia M., Riaz-ur R., Zarrin F., and Riaz A. 2009. In vitro direct regeneration in mint from different explants on half strength MS medium. African Journal of Biotechnology, Vol. 8, No. 18, pp 4667-4671.

29-Sayadi V., Mehrabi A.A., Saidi M., and Khoshnood N. 2014. In vitro culture and callus induction of Chamomile explants under different concentrations of plant growth regulators. International Jornal of Bioscience, Vol. 4, No. 10, pp 206-211.

30-Sharma R.K., Wakhlu A.K., and Boleria M. 2004. Micropropagation of Anethum graveolens L. Through auxiliary shoot proliferation. Plant Biochemistry Biotechnology, Vol. 13, pp 157-159.

31-Shasany A.K., Khanuja S.P.S., Dhawan S., Yadav U., Sharma S., and Kumar S. 1998. High regenerative nature of Mentha arvensis internodes. Journal of Bioscience, Vol. 23, pp 641-646.

32-Tripathi L., and Tripathi J.N. 2003. Role of biotechnology in medicinal plants. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, Vol. 2, No. 2, pp 243-253.

33-Venkatromalingam K., and Ebbie M.G. 2011. An efficient In vitro culture method of shoot regeneration cora medicinally important plant Mentha piperita L. Journal of Plant Sciences, Vol.10, pp 1-5.

34-Zaker Tavallaie F., Bagheri A., Ghareyazie B., and Sharma K.K. 2009. Optimization of tissue culture condition in lentil (Lens culinaris Medik. cv. Gachsaran) to induce effective multiple shoot induction. Iranian agronomy research Journal, Vol. 7, No. 2, pp 411-419.

35-Zhang H.X., and Zeevaart J.A.D. 1999. An efficient Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation and regeneration system for cotyledons of spinach (spinacia oleracea L.). Plant Cell Reports, Vol. 18, pp 640-645.