بررسی کالزایی و باززایی گیاه دارویی کاسنی (L.Cichoriumintybus) با استفاده از ریز نمونه‌های برگ و دمبرگ

علوم باغبانی

مقاله 15، دوره 29، شماره 4، اسفند 1394، صفحه 621-630   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v29i4.32672

نویسندگان

حمیرا هادیزاده^* ؛ مهدی محب الدینی؛ بهروز اسماعیل پور؛ اسماعیل چمنی

دانشگاه محقق اردبیلی

چکیده

کاسنی (Cichorium intybus L.) گیاه دارویی مهمی می‌باشد که به دلیل داشتن انواع مختلف ترکیبات دارویی حائز اهمیت می‌باشد. این تحقیق به منظور بهینه‌سازی کالوس‌زایی و باززایی گیاه کاسنی با استفاده از ریز نمونه‌های برگ و دمبرگ مورد مطالعه قرار گرفت. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام گردید.در این آزمایش از غلظت‌های مختلف نفتالین استیک اسید (NAA) (0، 1/0،3/0، 6/0، 1 میلی‌گرم در لیتر)، بنزیل آدنین (BA) (0، 1/0، 5/0، 1، 5/1 میلی‌گرم در لیتر) و کینتین (KIN)(0، 5/0، 1، 5/1 میلی‌گرم در لیتر) استفاده گردید. صفات در‌صد کالوس‌زایی، در‌صد باززایی، تعداد نوساقه‌های باززایی شده در هر ریز نمونه بررسی شد. در ترکیب هورمونی نفتالین استیک اسیدو بنزیل آدنین در هر دو ریز نمونه برگ و دمبرگ در همه ترکیب‌های هورمونی کالوس‌زایی مشاهده شد. در ترکیب هورمونی نفتالین استیک اسید و کینتین بیشترین درصد کالوس‌زایی در ریز نمونه برگ در محیط کشت حاوی 3/0 میلی‌گرم در لیتر نفتالین استیک اسید در ترکیب با هورمون کینتین با غلظت 1 و یا 5/1 میلی گرم در لیتر مشاهده شد و در ریز نمونه دمبرگ بیشترین درصد کالوس‌زایی در محیط کشت حاوی 3/0 میلی‌گرم در لیتر نفتالین استیک اسید و 1 میلی‌گرم در لیتر کینتینحاصل شد. در ترکیب هورمونی نفتالین استیک اسیدو بنزیل آدنین در هر دو ریز نمونه برگ و دمبرگ بیشترین باززایی از لحاظ درصد و تعداد نوساقه در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ (MS) حاوی 3/0 میلی‌گرم در لیتر نفتالین استیک اسید و 1/0 میلی‌گرم در لیتر بنزیل آدنینبدست آمد. در ترکیب هورمونی نفتالین استیک اسید وکینتیندر ریز نمونه برگ بیشترین باززایی از لحاظ درصد و تعداد نوساقه در محیط کشت موراشیگ و اسکوگحاوی 1/0 میلی‌گرم در لیتر نفتالین استیک اسید و 1 میلی‌گرم در لیتر کینتین و در ریز نمونه دمبرگ در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ حاوی 3/0 میلی‌گرم در لیترنفتالین استیک اسید و 5/0 میلی‌گرم در لیتر کینتین بدست آمد.

کلیدواژه‌ها

بنزیل آدنین؛ کینتین؛ محیط کشت؛ نفتالین استیک اسید؛ نو ساقه

مراجع

1-Abd Elaleem K.G., Modawi R.S., and Khalafalla M.M. 2009.Effect of plant growth regulators on callus induction and plant regeneration in tuber segment culture of potato (SolanumtuberosumL.) cultivar Diamant. African Journal of Biotechnology, 11: 2529-2534.

2-Ahmad N., Fazal H., and Zamir R. 2011.Callogenesis and shoot organogenesis from flowers of Stevia rebaudiana(Bert.). Sugar Technology, 2: 174 - 177.

3-Geun-Won CH., Dae-Sung K., Hyeon-Jeong H., Won Byoung CH., and Youn-Hyung L. 2009. Plant regeneration from cotyledon explants in leaf chicory (Cichoriumintybus L. var. foliosum).Horticulture, Environment and Biotechnology, 1: 40 - 44.

4-Han Y., Jin X., Wu F., and Zhang G. 2011.Genotypic differences in callus induction and plant regeneration from mature embryos of barley, Hordeumvulgare L., Journal of Zhejiang University Science, 5: 399-407.

5-Hohtola A. 1988. Seasonal changes in explant viabilityand contamination of tissue culture from mature scotpine. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 15: 211-222.

6-Hunter D.C., and Burritt D.J. 2002. Improved adventitious shoot production from cotyledon explants of lettuce (Lactuca sativa L.). ScientiaHorticulturae, 95: 269–276.

7- Hyeon-Jeon, H., Hea-Jung, J., Geun-Won, CH. 2009. Shoot regeneration from cotyledon explants in root chicory affected by culture temperature and medium composition,Korean Journal of Horticultural Science and Technology, 4: 662-667.

8-Jayasree T., Pavan U., Ramesh M., and Rao A.V. 2001.Somatic embryogenesis from leaf culture of potato. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 64: 13-17.

9-Kanamoto H., Yamashita A., Asao H., Okumura S., Takase H., Hattori M., Yokota A., and Tomizawa K.I. 2006. Efficient and stable transformation of Lactuca sativa L. cv. Cisco (lettuce) plastids. Transgenic Research, 15: 205-217.

10-Karimi H. 1975.Plant of Iran.Jahad University Press publisher.pp: 772-773. (In persion)

11-Lim T.L., Park E.J., Lee J.Y., Chun I.J., and An G.H. 2003. High plant regeneration and ectopic expression of OsMADS1 gene in root chicory (Cichorium withintybousL. var. sativus).Journal of Plant Biotechnology, 4: 215- 219.

12-Lima S.S., Esqulibl, M. A., Henreiques A.B., Silva F.O., Silva P.H.B., and Lage C.L.S. 2001.Monoclonal culture of erva-de-bicho (polygonum acreHBK var. aquatile) for commercial scale production of a phyto- therapeutic medicine. Brazilian Journal Medicinal Plant, 4: 51-55.

13-Murashige T., and Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.PhysiologiaPlantarum 15: 473-497.

14-Nandagopal S., and RavjithaKumari B.D.2006.Adeninsulphate induced high frequency shoot organogenesis in callus and in vitro flowering of Cichoriumintybus. L.cv .Focus-apotent medicinal plant.Actaagriculturaeslovenica, 2: 415-425.

15-Park E., and Lim H. 1999. Establishment of an efficient in vitro plant regeneration system in chicory (Cichoriumintybus L. var. sativus).ActaHorticulturae, 483: 367- 370.

16-Rehman R.U., Israr P.S., Srivastava P.S., Bansal K.C., and Abdin M.Z. 2003.In vitro regeneration of witloof chicory(CichoriumintybousL.) from leaf explantand accumulation of esculin.In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 39:142-146.

17-Rodriguez R. 1982. Callus initiation and root formation from in vitro culture of walnut cotyledon. HortScience, 17: 195-196.

18-Rout G.R., Samantarary S., and Das, P. 2000. In vitro manipulation and propagation of medicinal plants. Biotechnology Advances, 18: 91-120.

19-Sebastina M.M. 2004.In vitro callus induction and plants from stem and petiole explants of salvia canariensis L. Journal of plant Tissue culture, 14: 167-172.

20-Tripathi L., and Tripath J.N. 2003. Role of biotechnology in medicinal plants, Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2: 243-253.

21-Velayutham P., Ranjithakumari B.D., andBaskaran P. 2006. An efficient in vitro plat regeneration system for CichoriumintybusL. an important medicinal plant. Journal of Agricultural Technology, 2: 287-298.

22-Yasmin S., Nasiruddin K.M., Begum R., and Talukder S.K. 2003.Regeneration and establishment of potato plantlets through callus formation with BAP and NAA, Asian Journal of Plant Sciences, 12: 936-940.

23-Yucesan B., Turker A.U., andGurelE. 2007.TDZ-induced high frequency plant regeneration throughmultiple shoot formation in witloof chicory(CichoriumintybusL.).plant Cell, tissue and organ Culture, 91: 243-250.

24-Zargari A. 1989.Medicinal plants.Tehran university press.pp: 176. (In persion)