بررسی سرعت رشد میسلیوم و عملکرد جدایه های مختلف قارچ خوراکی دکمه ای سفید (Agaricus bisporus) در ایران

علوم باغبانی

مقاله 1، دوره 31، شماره 1، خرداد 1396، صفحه 99-109   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v0i0.44274

نویسندگان

محمدجواد احمدی لاهیجانی^* ؛ محمد فارسی

دانشگاه فردوسی مشهد

چکیده

در بین قارچ‌های خوراکی، قارچ خوراکی تکمه‌ای سفید، رایج‌ترین قارچی است که در سراسر جهان کشت می‌شود. به منظور بررسی سرعت رشد میسیلیوم و عملکرد جدایه‌های قارچ خوراکی دکمه‌ای سفید در محیط کشت جامد، اسپاون و کمپوست، پژوهشی در پژوهشکده قارچ دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد، در سال 1393 انجام شد. هجده جدایه قارچ خوراکی دکمه‌ای سفید از لحاظ سرعت رشد میسیلیوم روی محیط-های کشت پوتیتو دکستروز آگار (PDA)، عصاره کمپوست (CYM) و کمپوست، کلاس رشدی و تیپ رشدی میسلیوم و عملکرد مورد مقایسه قرار گرفتند. نتایج نشان داد که تفاوت بسیار معنی‌داری بین جدایه‌های قارچ خوراکی دکمه‌ای از نظر سرعت رشد میسیلیوم در محیط‌های کشت و میزان عملکرد وجود دارد. در محیط کشت PDA، بیشترین سرعت رشد به میزان 9/1 میلی‌متر در روز و قطر نهایی پرگنه 1/8 سانتی‌متر، متعلق به جدایه 2200 بود. همچنین، این جدایه از لحاظ سرعت رشد میسیلیوم در محیط CYM و پوشاندن سطح اسپاون و کمپوست نیز جزء جدایه‌های سریع بود و به همراه جدایه A15a از لحاظ عملکرد نیز از جمله‌ جدایه‌های با عملکرد زیاد بودند (A15a و 2200 به ترتیب 1/22 و 4/19 کیلوگرم در متر مربع). همچنین، بر اساس نتایج به دست آمده، سرعت رشد میسیلیوم با عملکرد همبستگی مثبت و معنی‌داری داشت و جدایه‌های با سرعت رشد میسیلیوم بیشتر عملکرد بیشتری تولید کردند. طبق نتایج به دست آمده، همبستگی مثبت و معنی‌داری بین سرعت رشد میسیلیوم در محیط کشت CYM و سرعت پوشاندن سطح کمپوست توسط میسیلیوم مشاهده شد، که می‌تواند به عنوان محیط کشت مناسب برای مقایسه سرعت رشد میسیلیوم در محیط آزمایشگاهی مورد استفاده قرار گیرد.

کلیدواژه‌ها

اسپاون؛ قطر پرگنه؛ تیپ رشدی میسیلیوم؛ کلاس رشدی میسیلیوم

مراجع

1- Aneja K.R. 2001. Experiment in microbiology plant pathology tissue culture and mushroom production technology. New Age International Limited.

2- Bastide P., Anton Y., Sonnenberg S.M., Van Griensven L., James J.L., Anderson D. Andpaul B. and Horgen A. 1997. Mitochondrial Haplotype Influences Mycelial Growth of Agaricus bisporus Heterokaryons. Applied and Environmental Microniology. 63:3426-3431.

3- Chang S.T. and Miles P.G. 1989. Edible mushrooms and their cultivation, CRC Press Inc, Boca Raton.

4- Diehle D.A. and Royse D.J. 1986. Shiitake cultivation on sawdust: evaluation of selected genotypes for biological efficiency and mushroom size. Mycologia. 78:929-933.

5- Eisenhut R. Fritz D. Medizinisch nutzbare W. and Inhaltsstoffe von S. 1991. Gartenbauwissenschaft, 56:266-270. (in German).

6- Emam Y. 2011. Cereal Production. 2th ed. Shiraz University Press.

7- FAO. 2012. Food and Agriculture Organization of the United Nation Quaterly bulletion of Statistucs, Rome, Italy.

8- Farsi M. and Gordan H.R. 2002. Hybrid spawn production in white button mushroom (Agaricus bisporous) in order to increasing yield. Agricultural Sciences and Technology Journal. 16:125-132. (in Persian).

9- Farsi M. and Poorianfar H. 2011. Cultivation and Breeding of the White Button Mushroom. 2th ed. Jahad Daneshgahi Mashhad Perss.

10- Farsi M., Taheri P., and Kordiani A. 2008. Evaluation of thermophile fungi in compost of white button mushroom. Journal of Horticultural Science, 24:265-275. (In Persian).

11- Gea F.J., Santos M., Dianez F., Tello J.C., and Navarro M.J. 2012. Effect of spent mushroom compost tea on mycelial growth and yield of button mushroom (Agaricus bisporus). World Journal of Microbiology and Biotechnology. 28:2765–2769.

12- Gordan H.R., and Farsi M. 2004. Selection of pure isolates and multi spore cultures for breeding the white button mushroom. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources. 11:65-77. (in Persian).

13- Gordan H.R., Khatami Raad M., Zolala J. and Farsi M. 2007. Introduction and registration of three modified button mushroom (Agaricus bisporous). Journal of Agricultural Science. 17:171-188. (in Persian).

14- Goyal R., Grewal R.B. and Goyal R.K. 2006. Nutritional attributes of Agaricus bisporus and Pleutorus sajor caju mushrooms. Nutrition and health. 18:179-184.

15- Griffin D.H. 1994. Growth, In: Fungal Physiology. 2ed. Wiley - Liss, New York.

16- Hassegawa R.H. Kasuya M.C.M. and vanetti M.C.D. 2005. Growth and antibacterial activity of lentinula edodes in liquid media supplemented with agricultural wastes. Electronic journal of biotechnology. 8:212-217.

17- Kalberer P.P. 1995. An investigation of the incubation phase of a shiitake (Lentinus edodes) culture. Mushroom Science. 14:375-383.

18- Kalmis E. and Kalyoncu F. 2008. Mycelial Growth Rate of Some Morels (Morchella spp.) In Four Different Microbiological Media. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Science. 3:861-864.

19- Kalmis E., and Kalyoncu F. 2008. The effects of some environmental parameters on mycelial growth of two ectomycorrhizal fungi, Tricholoma caligatum and Morchella angusticeps. Mycologia Balcanica. 5:115-118.

20- Kerrigan R.W., Royer J.C., Bailer L.M., Horgen P.A., and Anderson J.B. 1992. Stretegies for the efficient recovery of Agaricus bisporus homoharions. Mycologia. 84:575-579.

21- Khush R.V., Wach M.P., and Horgen P.A. 1995. Molecular strategies for Agaricus breeding. In: Kuck U. ed. The mycota. Vol. 3. Genetics and biotechnology. 2:321-337.

22- Lambert. J., Sapek A., and Sapek B. 1983. Lithium content in the grassland vegetation p. 32–38. In: Anke M., Baumann W. and Braunlich H. Eds. Lithium. 4th Spurenelement symposium. Jena. Friedrich Schiller Universitat, Germany. (http://eurekamag.com/research/001/219/001219146.php 2016).

23- Montini R.M.C., Passos J.R.S. and Eira A.F. 2006. Digital Monitoring of mycelium growth kinetics and vigor of shiitake (Lentinula edodes (Berk.) Pegler on agar medium. Brazilian Journal of Microbiology. 37:90-95.

24- Oei P. 2003. Mushroom cultivation, appropriate technology for mushroom growers. Leiden, Netherlands.

25- Pathak V.N., Yada N., and Maneesha G. 1998. Mushroom Production and Processing Technology. Agro Botanica, India.

26- Pawlak R., Siwulski M., and Salwin M. 2003. Effect of substrate type on the mycelium growth of four Hericium erinaceus (Bull. ex Fr.) Pers. Strains, Folia Horticulturae. 15:43-48.

27- Pokhrel C.P., Yadav. R.K.P. and Ohga S. 2009. Effects of physical factors and synthetic media on mycelia growth of Lyophyllum decastes. Journal of Ecobiotechnology. 1:46-50.

28- Przybylowicz P. and Donoghue J. 1990. Shiitake Growers Handbook, the art and science of mushroom cultivation. Kendall/Hunt Publishing Company, USA.

29- Razeghi Yadak L., Azizi M., Farsi M., and Shahtahmasebi Sh. 2009. Evaluation effect of media formulation, pH and temperature on "shiitake” mycelium growth analysis on solid and liquid culture conditions. Journal of Horticultural Sciences, 23:18-26. (In Persian with English abstract).

30- Royse D. 2007. ICT Web Development. Available at http://www.ppath.cas.psu.edu/ FACULTY/royse.html.

31- Royse D.J., and Bahler C.C. 1986. Effects of genotype, spawn run time and substrate formulation on biological efficiency of shiitake. Applied Environment and Microbiology. 52:1425-1427.

32- Rühl M., Fischer Ch., and Kües U. 2008. Ligninolytic enzyme activities alternate with mushrooms production during industrial cultivation of Pleurotus ostreatuson wheat-straw-based substrate. Current Trends in Biotechnology and Pharmacy. 4:478–492.

33- Sanchez C. 2010. Cultivation of Pleurotus ostreatus and other edible mushrooms. Applied Microbiology and Biotechnology. 85:1321–1337.

34- Sanchez C. 2004. Modern aspects of mushrooms culture technology. Applied Microbiology and Biotechnology. 64:756–762.

35- Siwulski M., Krzysztof S., and Malgorzata W. 2009. Comparison of mycelium growth and yielding of selected strains of Hericium erinaceus (Bull. Fr.) Pers. on sawdust substrates with the glucose addition. Kerla polonica. 55:266-272.