بهینه‌سازی عوامل موثر در ازدیاد درون شیشه‌ای پایه میروبالان c29

علوم باغبانی

مقاله 5، دوره 31، شماره 3، آذر 1396، صفحه 438-447   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v0i0.33469

نویسندگان

زهرا شعبانی¹؛ بهرام عابدی¹؛ ابراهیم گنجی مقدم²؛ علی تهرانی فر^{* 1}

¹دانشگاه فردوسی مشهد

²مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی

چکیده

این مطالعه با هدف بررسی اثر محیط کشت و تنظیم کننده‌های رشد بر شاخه‌زایی، ریشه‌زایی و سازگاری میروبالانC29 انجام شد. در این مطالعه از آزمایش فاکتوریل بر پایه طرح کاملا تصادفی با 4 تکرار و هر تکرار شامل 5 نمونه استفاده شد. به منظور ضد عفونی نمونه های گیاهی از 2 تیمار، شامل اتانول 70 درصد در 1 دقیقه و هیپوکلریت سدیم 10 درصد در 10 دقیقه استفاده شد. نتایج نشان داد هیپوکلریت سدیم 10 درصد به مدت 10 دقیقه، با 4 درصد آلودگی ریز نمونه های سال جاری بهترین تیمار ضدعفونی بود. از دو نوع محیط کشت شامل MS و DKW و تنظیم کننده رشد بنزیل آمینوپورین در غلظت های 0، 1، 2، 3 و 4 میلی گرم در لیتر در مرحله پرآوری و ایندول بوتیریک اسید در غلظت های 0، 1، 2 و3 میلی گرم در لیتر در مرحله ریشه زایی استفاده شد. نتایج نشان داد که محیط کشت MS حاوی 2 میلی گرم در لیتر بنزیل آمینو پورین با میانگین پر آوری 16/6 شاخساره، و طول 51/2 سانتی متر بیش ترین شاخه زایی و بیش ترین درصد ریشه زایی در محیط MS حاوی 2 میلی گرم در لیتر IBA و طول ریشه به میزان 100 درصد و 75/6 سانتی متر، به دست آمد. سازگاری گیاهچه ها به شرایط گلخانه ای با استفاده از سیستم مه افشانی، با موفقیت انجام شد بالاترین درصد بقای گیاهچه (0/70 درصد) در محیط کوکوپیت و پرلایت (1:1 حجمی) به دست آمد.

کلیدواژه‌ها

پرآوری؛ ریشه زایی؛ سازگاری؛ ضدعفونی

مراجع

1- Asadi A. A., Vedadi C., Rahimi M., and Naserian B. 2009. Effect of plant growth hormones on root and shoot regeneration in rose (Morrasia) under in-vitro conditions, Bioscience Research, 6(1): 40-45.

2- Azadi P., Khosh- Khui M., Beyramizadeh E., and Bagheri H. 2007. Optimization of factors affecting in vitro proliferation and rooting of Rosa hybrida L. cv. 'Rafaela', International Journal of Agricultural Research, 2(7): 626-631.

3- Channuntapipat Ch., Sedgley M., and Collins G. 2003. Micropropagation of almond cultivars Nonpariel and Ne Plus Ultra and the hybrid rootstock Titan × Nemagard. Sci. Hort. 98:473-484.

4- Damiano.C., Delia G. 2009. In vitro multiplication, rooting acclimatization and related protein profiles of rootstock citation (Prunus.Salicina × prunus. Persica). Acta Horticulturas, 812: 218-227.

5- Hartmann H.T., Kester D.E., and Davies F.T. 1990. Plant propagation, principles and practices. Prentice-Hall International, New Jersey, USA, Pp, 145-89.

6- Ganji Moghadam, A., and Abdollahzadeh A. 2009. Guide fruit trees rootstock (Translate). Khorasan Razavi Agricultural and Natural Resources Research Center٫S155-184. (Edited book).

7- Gudin S. 2000. Rose: genetics and breeding. Plant Breeding Review, 17: 59-189.

8- George E. F. 2008. Plant propagation by tissue culture. Plant Cellular Reproduction, 18: 6-113.

9-Izad Panah. 2004. The effects of age and genotype on theway propagation Sweet Cherry (Prunus avium) in vitro.Natural Sources٫64:63-70. (in Persian)

10-Kamali K., Majidi A., and Zarghami R. 2002. Determine the most suitable culture medium and growth conditions Micropropagationof vegitative GF677 (hyberid Paech×Almound) rootstock. Journal and seed, 17:38-47. (in Persian)

11- Larson E. L., and Morton H. E. 1991. Disinfection, Sterilization and Preservationon, In Alcohols.

12-Mahdavyan M., Bozari N., and Abdollahi H. 2010. Effect of media and plant growth regulators on proliferation and rooting Mahaleb (Sent losi 64) of vegitative rootstock .Journal and seed٫ 1:15-26. (in Persian)

13- Movsiuw A. 2011. In vitro propagation of virus-free Myrobalan 29c rootstock. GRI, 7349:101-102.

14- Ruzic D. V., Vajovic. T. I., 2013. The effect of cytoknins types and their concentration on in vitro multiplication of sweet cherry. Horticulture Scienc, 35: 12-21.

15- Sana B., Ghosh D., Saha M., and Mukherjee J. 2006. Purification and characterization of a salt, solvent, detergent and bleach tolerant protease from a new gamma- Proteobacterium isolated from the marine environment of the Sundarbans. Process Biochemistry, 41(1): 208-215.

16- Soleymanpor A., and Bozari N. 2012. Effect of media and plant growth regulators in micro propagation Mahaleb (SL- 64) of vegitative rootstock.Especially a genetic Congress Iran, 12:1-5.9. (in Persian)

17- Pati P. K., Rath S. P., Sharma M., and Ahuja P. S. 2005. Micropropagation, protoplast cu lture and its implications in the improvement of scented rose. Acta Horticulturae, 547: 147-158.

18- Plopa C., Dutu N., Isac V., Mazilu C., Ancu S. 2010. Factors Influencinrg in Vitro Propagation of Myrobolan Dwarf Plum Root stock. ISHS Acta Horticulturae, 966:221-223.

19- Perez-Tornero O., Opez J.M.L. 2000. Effect of basal media and growth regulators on the in vitro propagation of apricot (prunus armenica L.) cv. Cannino, j. Hort. ci, Biotech, 75: 283-286.

20- Pruski K., Astatkle T. 2005. Tissue culture propagation of monogolian cherry (prunus froticosa) and nanking cherry (Prunus tomentosa). Plant Cellular Tissue and Organ Culture, 82: 207-211.

21- Yadollahi A., Nazari Moghadam Aghaee R., and Moeeni A. 2009.Effect composition BAP and NAA on prolifiration Gisela rootstock. Especially a genetic Congress Iran, 3:1-5. (in Persian)

22- Yari F., and Mosavi A. 2012. Optimization in vitro five varieties of cut roses (Roza hybrida L.). Biotechnology in agriculture٫ 10: 17-26.

23- Ying-Ning Z. 2010. Micropropagation of Chinese Plum (Prunus salicina Lindl.) Using Mature Stem Segments. Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj, 38 (3): 214-218.

24- Zlesak D. 2006. Rose. In Flower Breeding and Genetics, 695-740 (Ed N. Anderson). Springer Netherlands.

25-Zolfaghari Nasab R., Khosro shahi M., Gerigoryan V., and Matlabi azar A. 2005. The effects in vitro propagation natural hybrid Apricot×plum. Journal of Horticultural Science and Technology, 5: 81-92 (in Persian)