تاثیر اشکال مختلف سلنیوم بر فراسنجه های تولید گاز، تخمیر شکمبه و جمعیت پروتوزوآی شکمبه

پژوهشهای علوم دامی ایران

مقاله 3، دوره 11، شماره 3 - شماره پیاپی 39، مهر 1398، صفحه 307-317   

نوع مقاله: علمی پژوهشی - تغذیه نشخوارکنندگان

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.v11i3.68454

نویسندگان

سمیرا دهقانی؛ اکبر تقی زاده^* ؛ حمید محمدزاده

گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران

چکیده

تحقیق حاضر به منظور ارزیابی اثر اشکال مختلف سلنیوم بر تولید گاز، تخمیر شکمبه و جمعیت پروتوزوآی شکمبه گوسفندان قزل گرفت. تیمارهای آزمایشی شامل 1. کنسانتره بدون مکمل سلنیوم 2. کنسانتره +ppm 3/0 نانوسلنیوم 3. کنسانتره + ppm 3/0 سلنیوم آلی و 4. کنسانتره + ppm 3/0 سلنیوم معدنی بودند. در روش تولید­گاز 300 میلی­گرم از هر نمونه در ساعات 2، 4، 6، 8، 12، 16، 24، 36، 48، 72 و 96 انکوباسیون گردید. به منظور بررسی تاثیر اشکال مختلف سلنیوم بر اکوسیستم شکمبه، فاکتورهای pH، اسیدهای­چرب فرار، نیتروژن آمونیاکی و جمعیت پروتوزوآیی مورد بررسی قرار گرفت. از ساعت 36 انکوباسیون به بعد میزان تولید گاز تیمارهای حاوی سلنیوم به طور معنی داری بیشتر از تیمار کنترل بود، اما تفاوت معنی داری از نظر تولید گاز بین این 3 تیمار وجود نداشت. پتانسیل تولید گاز در تیمارهای حاوی سلنیوم از تیمار کنترل بیشتر بوده (به ترتیب 9/201، 0/344، 7/321 و 8/319 میلی لیتر در تیمارهای شاهد، سلنیوم نانو، آلی و معدنی) ولی تفاوت معنی داری بین تیمارهای حاوی انواع مختلف سلنیوم وجود نداشت. تفاوت معنی­داری بین تیمارها از نظر pH شکمبه وجود نداشت. تیمار نانو­ به طور معنی­داری موجب افزایش غلظت اسیدهای چرب فرار نسبت به تیمارهای آلی و معدنی شد (به ترتیب 83/109، 00/98 و 83/89 میلی مول بر لیتر در تیمارهای سلنیوم نانو، آلی و معدنی). تفاوت معنی­داری بین تیمارها از نظر میزان نیتروژن آمونیاکی شکمبه وجود نداشت. تیمار سلنیوم آلی موجب افزایش معنی­دار تعداد کل پروتووزآ نسبت به تیمار سلنیوم معدنی و نانو سلنیوم شد. نتایج تحقیق نشان داد که افزودن مکمل سلنیوم خصوصا به شکل نانو نسبت به فرم رایج معدنی آن، احتمالا از طریق بهبود فرآیند تخمیر در محیط شکمبه، موجب افزایش پتانسیل تولید گاز شد.

مراجع

1. AbdElGhany, H, and J. L. Tortora-Perez. 2010. The importance of selenium and the effects of its deficiency in animal health. Small Ruminant Research, 89: 185-192.

2. AOAC. 2002. Official Methods of Analysis. 17th Edn. AOAC International, Gaithersburg, Maryland, USA.

3. Barceloux, D. G. 1999. Selenium. Journal of Clinical Toxicology, 37: 145-172.

4. Blummel, M, and E. R. Ørskov. 1993. Comparison of gas production and nylon bag degradability of roughages in predicting feed intake in cattle. Animal Feed Science and Technology, 40: 109–119.

5. Broderick, G. A, and J. H. Kang. 1980. Automated simultaneous determination of ammonia and total amino acids in ruminal fluid and in vitro media1. Journal of Dairy Science, 63(1): 64-75.

6. Faixova, Z., S. Faix, L. Leng, P. Vaczi, Z. Makova, and R. Szaboova. 2007. Hematological, blood and rumen chemistry changes in lambs following supplementation with Se-yeast. Acta Veterinaria Brunensis, 76: 3-8.

7. Fedorak, P. M, and S. E. Hrudey. 1983. A simple apparatus for measuring gas production by methanogeniccultuvesin serum bottles. EnvirinTechnollett, 4: 425-435.

8. Fujihara, T., T. Imamura, and E. A Orden. 2004. Utilization of protozoal selenium in young Goats. Journal of Animal Feed Science, 13: 265-268.

9. Getachew, G., H. P. S. Makkar, and K. Becker. 2002. Tropical browses: content of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acids and in vitro gas production. Journal of Agricultural Science, 139: 341-352.

10. Hidiroglou, M., D. P. Heaney, and K .J. Jenkins. 1968. Metabolism of inorganic selenium in rumen bacteria. Canadian Journal of Physiological Pharmacology, 46: 229–232.

11. Hidiroglou, M., and K. J. Jenkins. 1974. Influence of defaunation on the utilization of selenomethionine in the sheep. Annales De Biologie Animale, Biochimie, Biophysique, 14: 157–165.

12. Ivan, M., L. Neill, and T. Entz. 2000. Ruminal fermentation and duodenal flow following progressive inoculation of fauna free wethers with major individual species of ciliate protozoa or total fauna. Journal of Animal Science, 78: 750-759.

13. Kim, J., P. J. Vansoest, and G. F. Combs. 1997. Studies on the effects of selenium on rumen microbial fermentation in vitro. Biological Trace Element Research, 56: 203-213.

14. Klasing, K. C., J. P. Goff, and J. L. Greger. 2005. Selenium: Mineral tolerance of animals. The National Academics Press, Washington, DC. pp, 321-347.

15. Markham, R. 1942. A steam distillation apparatus suitable for micro-Kjeldahl analysis. Biochemical Journal, 36(10): 790-795.

16. McDougall, E. I. 1948. The composition and output of sheep in saliva. Biochemical Journal, 43: 99-109.

17. Menke, K. H., L. Rabb, A. Saleweski, H. Steingass, D. Fritz, and W. Schnider. 1979. The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feed stuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. Journal of Agricultural Science, 93: 217-222.

18. Menke, K. H, and H. Steingass. 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and gas production using rumen fluid. Animal Research Development, 28: 7–55.

19. Mihalikova, K., L. Gresakova, K. Boldizarova, S. Faix, L. Leng, and S. Kisidayova. 2005. The effects of organic selenium supplementation on the rumen ciliate population in sheep. Folia Microbiology, 50: 353-356.

20. Naziroglu, M., M. Aksakal, M. Cay, and S. Celik. 1997a. Effects of vitamin E and selenium on some rumen parameters in lamb. Acta Veterinaria Hungarica, 45: 447–456.

21. Naziroglu, M., M. Aksakal, M. Cay, and S. Celik. 1997b. Effects of vitamin E and selenium on rumen protozoa in lambs. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 21: 81–90.

22. Ogimoto, K, and S. Imai. 1981. Atlas of Rumen Microbiology. Japan Scientific Society Press, Tokyo.

23. Opatpatanakit, Y., R. C. Kellaway, I. J. Lean, G. Annison, and A. Kirby. 1994. Microbial fermentation of cereal grains in vitro. Australian Journal of Agricultural Research, 45: 1247-1263.

24. Ramirez, B. J. E., J. L. TortoraHernandez, and M. Huerta. 2001. Main causes of mortalities in dairy goat kids from the Mexican plateau. Small Ruminant Research, 41: 77-80.

25. Shi, L. G., W. J. Xun, W. B. Yue, C. X. Zhang, Y. S. Ren, Q. Liu, Q. Wang, and L. Shi. 2011. Effect of elemental nano-selenium on feed digestibility, rumen fermentation, and purine derivatives in sheep. Animal Feed Science and Technology, 163: 136–142.

26. Underwood, E. J., and N. F. Suttle. 1999. The mineral nutrition of livestock. CAB international, Wallingford, U.K.

27. Van soest, P. J., J. B. Robertson, and B. A. Lewis. 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber,and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science, 74: 3583-3592.

28. Wang, C., Q. Liu, W. Z. Yang, Q. Dong, X. M. Yang, D. C. He, P. Zhang, K. H. Dong, and Y. X. Huang. 2009. Effects of selenium yeast on rumen fermentation, lactation performance and feed digestibilities in lactating dairy cows. Livestock Science, 126: 239–44.

29. Xun, W., L. Shi, W. Yue, C. H. Zhang, Y. Ren, Q. Liu. 2012. Effect of high dose nano-selenium and selenium–yeast on feed digestibility, rumen fermentation, and purine derivatives in sheep. Biological Trace Element Research, 150: 130–136.