تعداد نشریات | 49 |
تعداد شمارهها | 1,844 |
تعداد مقالات | 19,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 9,282,489 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,513,567 |
نقش اکوتیپ، ریزنمونه و تنظیمکنندههای رشد گیاهی در کشت تعلیقی سلولی چویل (Ferulago angulata (Schlecht.) Boiss.) | ||
علوم باغبانی | ||
مقاله 13، دوره 33، شماره 3، آذر 1398، صفحه 525-536 اصل مقاله (862.58 K) | ||
نوع مقاله: مقالات پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhorts4.v33i3.79173 | ||
نویسندگان | ||
سید مهران علوی1؛ اسد معصومی اصل* 2؛ ناصر زارع1؛ رسول اصغری زکریا1؛ پریسا شیخ زاده مصدق1 | ||
1دانشگاه محقق اردبیلی | ||
2دانشگاه یاسوج | ||
چکیده | ||
گیاه چویل دارای خواص داروئی مختلف بوده و تاکنون گزارشی از کشت تعلیقی سلولی این گیاه بومی ایران ارائه نشده است. به منظور ارزیابی تأثیر عوامل مختلف بر پینهزایی چویل، آزمایشی به صورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی اجرا شد. فاکتورها شامل اکوتیپ (آبنهر، گایونه، وزگ و سیسخت)، ریز نمونه (ریشه، برگ و ساقه) به همراه ترکیبات هورمونی مختلف NAA و BAP (هر کدام در غلظتهای 0، 5/0، 1 و 2 میلیگرم در لیتر) در محیط کشت پایه موراشیگ و اسکوگ بودند. نتایج نشان دادند که بهترین اکوتیپ در واکنش به پینهزایی، اکوتیپ آبنهر و بهترین ریزنمونه، ریزنمونه برگی و بهترین ترکیب هورمونی شامل 1 میلیگرم در لیتر NAA و 5/0 میلیگرم در لیتر BAP بود. به منظور بررسی تأثیر عوامل مختلف بر کشت تعلیقی سلولی چویل، علاوه بر هورمون NAA، از سطوح مختلف (غلظتهای 0، 5/0، 1 و 2 میلیگرم در لیتر) هورمون 2,4-D نیز در ترکیب با هورمون BAP استفاده شد. بهترین ترکیب هورمونی برای کشت تعلیق سلولی، 2 میلیگرم بر لیتر NAA یا 2,4-D به همراه 5/0 میلیگرم بر لیتر BAP بود و بهترین ریزنمونه و اکوتیپ به ترتیب، ریزنمونه برگی و اکوتیپ آبنهر بود. در مجموع، اکوتیپ آب نهر و ریزنمونه برگی هم در کشت پینه و هم در کشت تعلیقی سلولی نسبت به بقیه اکوتیپها و ریزنمونهها برتری نشان دادند و بهترین ترکیب هورمونی در هر دو نوع کشت 2-1 میلیگرم در لیتر NAA و 5/0 میلیگرم در لیتر BAP بود. | ||
کلیدواژهها | ||
پینه؛ تنظیمکننده رشد؛ ژنوتیپ؛ SCV؛ PCV | ||
مراجع | ||
1-Abrazeh M. 2004. Investigation of some ecological characteristics of Chavil (Ferulago angulata) in protected Dena area. Ms.C thesis in Natural resources, Tarbiat Modarres University, Tehran. (In Persian)
2-Bhojwani S.S., and Razdan M.K. 1992. Plant tissue culture, Theory and practice. Elsevier, Amsterdam, London, New York, Tokyo.
3-Daud Z., and Keng C.L. 2006. Effects of plant growth regulators on the biomass of embryogenic cells of Cyperus aromaticus (Ridly) Mattf and Kukenth. Biotechnology 5:75-78.
4-Darderafshi M.J., Bahrami G.h., Sadeghi E., Khanahmadi M., Mohammadi M., and Mohammadi R. 2014. The effect of Ferulago angulata essential oil on Staphylococcus aureus during the manufacture and preservation of Iranian white cheese. Iranian Journal of Nutrition Sciences and Food Technology 8(4):13-20. (In Persian with English abstract)
5-Dixon R.A., and Gonzales R.A. 1996. Plant Cell Culture: A Practical Approach. 2nd Ed. IRL Press.
6-Ehsanpour A.A., and Amini F. 2003. Plant Cell and Tissue Culture. Jahad-Daneshgahi-Esfahan Publisher. (In Persian)
7-Evans D.E., Coleman J.O.D., and Kearns A. 2003. Plant cell culture: The basics. London, Taylor & Francis Publisher.
8-Farjaminezhad R., Zare N., Asghari-Zakaria R., and Farjaminezhad M. 2014. Establishment and optimization of cell growth in suspension culture of Papaver bracteatum a biotechnology approach for thebaine production. Turkish Journal of Biology 37:689-697.
9-Farsi A.R., and Zulali J. 2014. Principles of plant biotechnology. Six Edition. Mashhad Ferdousi University Press. Iran. (In Persian)
10-Foladvand Z., Fazelinasab B., darikvand R., and Gasmi-pirbaloti A. 2014. Optimization of Callus Induction and Cell Suspension in Catharanthus roseus. Journal of Herbal Drugs, 5(3):157-163. (In Persian)
11-Ghasemian K.h., Nazeri S., Chehregani-Rad A., and Mirzaie-Asl A. 2012. The stages of somatic embryogenesis derived from zygotic embryo of Dorema ammoniacum D. Journal of Cell & Tissue (JCT) 3(1): 21-27. (In Persian with English abstract)
12-Gurel S., Gurel E., and Kaya Z. 2001. Callus development and indirect shoot regeneration from seedling of sugar beet (Beta vulgaris L.) cultured in vitro. Turkish Journal of Botany 25: 25-33.
13-Hren M., Baebler S., Camloh M., Kovac M., Ravnikar M., and Zel J. 2006. Yew (Taxus x media Rehd.) cell suspension cultures as a source of taxanes. Acta Physiological Plantarum 28: 3-8.
14-Hussain Z., Haroon M., Bano R., Rashid H., and Chaudhry Z. 2010. Protocol optimization for efficient callus induction and regeneration in three Pakistani rice cultivars. Pakistan Journal of Botany, 42:879-887.
15-Janarthanam B., Gopalakrishnan M., Lakshmi Sai G., and Sekar T. 2009. Plant regeneration from leaf derived callus of Stevia rebaudiana Bertoni. Plant Tissue Culture and Biotechnology 19(2): 133-141.
16-Khalil S.M., and Elbanna A.A.M. 2003. Highly efficient somatic embryogenesis and plant regeneration via suspension cultures of banana (Musa spp.). Arab Journal of Biotechnology 7: 99-110.
17-Khawar K.M., Sarihan E.O., Sevimay C.S., Cocu S., Parmaksiz I., Uranbey S., Ipek A., Kaya M.D., Sancak C., and Özcan S. 2005. Adventitious shoot regeneration and Micropropagation of Plantago lanceolata L. Periodicum Biologorum 107:57–61.
18-Koohi L., Zare N., Asgari-zakaria R., Sheikhzadeh-Mosaddeg P., and Daryani P. 2013. The role of plant growth regulators and different explants on the tissue culture response and cell suspension in German chamomile (Matricaria chamomilla L.). Journal of Crop Ecophysiology 2 (30): 203-214. (In Persian with English abstract)
19-Kwon T.H., Abe T., and Sasahara T. 1993. Efficient callus induction and plant regeneration in Sesamum species. Plant Tissue and Culture Letters 10: 260-266.
20-Lee E., Mobin M., Hahn E.J., and Paek K.Y. 2006. Effects of sucrose, inoculum density, auxins, and aeration volume on cell growth of Gymnema sylvestre. Journal of Plant Biology 49: 427-431.
21-Lukmanul Hakkim F., Kalyani S., Essaa M., Girija S., and Song H. 2011. Production of rosmarinic acid in Ocimum sanctum (L.) cell suspension cultures by the influence of growth regulators. International Journal of Biological and Medical Research 2(4): 1158-1161.
22-Molina S.M. 2004. In vitro callus induction and plants from stem and petiole explants of Salvia canariensis L. Plant and Tissue Culture 14: 167-172.
23-Mortazavi R., Dehdari M., and Masoumiasl A. 2016. Study of Callus Induction of Medicinal Chavil Plant (Ferulago angulata B.) Using Types of Explants and Growth Regulators. Agricultural Biotechnology 14(2): 73-80. (In Persian with English abstract)
24-Mozaffarian V. 2007. Iranian Plant Culture Names. First Volume, First edition, Farhang-e- Moaser Publisher. Tehran, Iran. (In Persian)
25-Mujib A., Bandhyopadhyay S., and Ghosh P.D. 2000. Tissue culture derived plantlet variation in Caladium an important ornamental. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 10: 149-155.
26-Murashige T., and Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures. Physiological Plantarum 15: 473-497.
27-Mythili J.B., and Thomas P. 1999. Micropropagation of Pointed Gourd (Trichosanthes dioica Roxb.). Scientia Horticulture 79: 87-90.
28-Ozgen M., Turet M., Altinok S., and Sancak C. 1998. Efficient callus induction and plant regeneration from mature embryo culture of winter wheat (Triticum aestivum L.) genotypes. Plant Cell Reports 18: 331-335.
29-Palai S.K., Rout G.R., and Das P. 1997. Micropropagation of ginger (Zingiber officinale Rosc.): interaction of growth regulators and culture conditions. Proceeding of Biotechnology of Spices, Medicinal and Aromatic Plants, Kerala, 20–24.
30-Perez-Bermudez P., Cornejo M.J., and Segura J. 1983. In vitro propagation of Digitalis obscura L. Plant Science Letters 30: 77-82.
31-Phillips G.C., Hubstenberger J.F., and Hansen E.E. 1995. Plant regeneration by organogenesis from callus and cell suspension cultures. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Heidelberg: Springer and Verlag, 67-78.
32-Ramirez-Malagon R., Borodanenco A., Barrera-Guerra J.L., and Ochoa-Alejo N. 2001. Shoot number and shoot size as affected by growth regulators in in vitro Cultures of Spathiphyllum floribundum L. Scientia Horticulture 89: 227-236.
33-Richard D., Lescot M., Inze D., and De Veylder L. 2002. Effect of auxin, cytokinin, and sucrose on cell cycle gene expression in Arabidopsis thaliana cell suspension cultures. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 69: 167-176.
34-Senoussi M.M., Nora B., and Joe C. 2009. Impact of hypoxia on the growth and alkaloid accumulation in Catharanthus roseus cell suspension. Acta Physiologiae Plantarum 31: 359–362.
35. Sarabadani-tafreshi R., Omidi M., Bihamta M.R., and Davazdahemami S. 2008. Study of in vitro embryo culture and Effect of explants, different hormonal levels on callus induction and shooting of Ferula gummosa. Journal of Medicinal Plants 27: 71-81. (In Persian)
36-Shahadati-Moghadam Z. 2001. Plant growth regulators. M.Sc. Thesis of agriculture, Mazandaran University, Iran. (In Persian)
37-Sorbi E., Moradi a., Masoumiasl A., and Balochi H.R. 2017. Optimization of Callus Induction and somatic embryogenesis in twoGenotypes of medicinal Chavil plant (Ferulago angulata L.). Plant Production Research 21(3): 41-62. (In Persian)
38-Silveira V., Floh E.I.S., Handro W., and Pedro Guerra M. 2004. Effect of plant growth regulators on the cellular growth and levels of intracellular protein, starch and polyamines in embryogenic suspension cultures of Pinus taeda. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 76: 53-60.
39-Street H.E. 1977. Plant tissue and cell culture. 2nd Edition, Blackwell. Oxford.
40-Taha H.S., El-Bahr M.K., and Seif-El-Nasr M.M. 2008. In vitro studies on Egyptian Catharanthus roseus (L.) G. Don.: 1- calli Production, direct shootlets Regeneration and alkaloids determination. Journal of Applied Science Research 4: 1017-1022.
41-Taran M., Ghasempour H.R., and Shirinpour E. 2010. Antimicrobial activity of essential oils of Ferulago angulata subsp. Carduchorum. Jundishapur Journal of Microbiology 3: 10-4. (In Persian)
42-Zare A., Solouki R., Omidi M., Irvani M., Mahdi-Nezad N., and Rezazadeh S.H. 2010. Callus induction and plant regeneration in Ferula assa-foetida L. (Asafetida), an endangered medicinal plant. Trakia Journal of Sciences 8(1): 11-18. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 517 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 403 |