ارزیابی اثر دگرآسیبی دوره‌های پوسیدگی اندام‌های مختلف گوش‌بره (Chrozophora tinctoria L.) بر رشد گیاه‌چه گوجه‌فرنگی (.Lycopersicon esculentum mill)

پژوهش های حفاظت گیاهان ایران

مقاله 9، دوره 32، شماره 1 - شماره پیاپی 39، خرداد 1397، صفحه 157-161   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jpp.v32i1.59541

نویسندگان

حسین حمامی^{* 1}؛ آرمین آزادی²؛ رضا صدرآبادی حقیقی³

¹دانشگاه بیرجند

²دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مشهد

³دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد

چکیده

به‌منظور بررسی اثرات دوره‌های پوسیدگی اندام‌های مختلف گیاه گوش‌بره بر رشد گیاهچه گوجه‌فرنگی آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در 4 تکرار در سال 1393 در گلخانه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد اجرا شد. آزمایش دارای 2 عامل اندام‌های گوش بره در 4 سطح (ریشه، ساقه، برگ و گیاه کامل بدون گل‌آذین) و دوره‌های پوسیدگی در 8 سطح (0، 15، 30، 45، 60، 75 و 90 روز پوسیدگی و نیز شاهد) بود. نتایج نشان داد که دوره‌های پوسیدگی، نوع اندام و همچنین اثرات متقابل دوره‌های پوسیدگی و نوع اندام اثر معنی‌داری بر وزن خشک گوجه‌فرنگی داشتند. افزایش دوره پوسیدگی تا 45 روز منجر به کاهش وزن خشک گوجه‌فرنگی شد درحالی‌که با افزایش دوره پوسیدگی از 45 روزبه بعد افزایش تدریجی وزن خشک مشاهده شد. بیشترین شدت کاهش وزن خشک تولیدی مربوط به برگ‌های پوسیده بود.

کلیدواژه‌ها

برگ؛ دوره پوسیدگی؛ وزن خشک

مراجع

1- Blum U. 2014. Plant-Plant Allelopathic Interactions II Laboratory Bioassays for Water-Soluble Compounds with an Emphasis on Phenolic Acids. Springer Cham Heidelberg New York Dordrecht London. Pp 322.

2- Einhelling F.A. 2004 Mode of allelochemical action of phenolic compounds. In: Allelopathy. Macias FA. Galindo JCG. Molinillo JMG. Cutler HG. CRC press, pp: 217 238.

3- Ghorbani R., Rashed Mohasel M.H., Hosseini A., Mosavi K., and Haj Mohammadnia Ghalibaf K. 2009. Sustanable weed management. Publishers University of Mashhad.

4- Li Y., Sun Z., Zhuang X., Xu L., Chen S., and Li M. 2003. Research progress on microbial herbicides. Crop Protection, 22: 247-252.

5- Mohamed K.M. 2001. Phenylpropanoid glucosides from Chrozophora obliqua. Phytochemistry, 58(4):615–618.

6- Najafi H., Hassanzadeh Deloie M., Rashed Mohasel M.H., Zand E., and Baghestani M.A. 2006. Ecological weed management. Publishers Plant Pests and Diseases Research Institute.

7- Orouji K., Khazaei H.R., Rashed Mohasel M.H., Ghorbani R., and Azizi M. 2008. Allelopathic effects of sunflower (Helianthus annuus) on germination and initial growth of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus) and common lambsquarter (Chenopodium album). Journal of Plant Protection 22: 119-128. (In Persian with English Summary)

8- Usman H., Musa Y.M., Ahmadu A.A., and Tijjani MA. 2007. Phytochemical and Antimicrobial Effects of Chrozophora Senegalensis. The African Journal of Traditional, Complementary, and Alternative medicines, 4, 488–494.

9- Raoof Fard F., and Omidbeigi R. 2011. The survey of allelophathic characteristic shoot of Angelica (Angelica archangelica) herb plant. Journal of Horticultural science 25 (3): 261-266. (In Persian with English Summary)

10- Seyyedi S.M., Rezvani Moghaddam P., Shahriari R., Azad M., and Jafari L. 2014. Allelopathy effect of aqueous extract and duration decay of sunflower (Helianthus annus) organs on decreasing seed germination and seedling growth of dodder (Cuscuta campestris). Journal of Agroechology 6 (1): 1-10. (In Persian with English Summary)

11- Seyyedi S.M., Rezvani Moghaddam P., Shahriari R., and Azad M. 2015. Effect of allelophathy different organs of Castor bean (Ricinus communis) on deacreasing seed germination and seedling growth of dodder (Cuscuta campestris). Journal of Agroechology 7 (2): 156-167. (In Persian with English Summary)

12- Xuan T.D., Shinkichi T., Khanh T.D., and Chung I.M. 2005. Biological control of weeds and plant pathogens in paddy rice by exploiting plant allelopathy: An overview. Crop Protection 24: 197- 206.