اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات52
تعداد شماره‌ها2,087
تعداد مقالات21,634
تعداد مشاهده مقاله74,003,366
تعداد دریافت فایل اصل مقاله24,920,790
آقامحمدی, ناهید, هژبری, فردین, علی پور, داریوش. (1401). پایداری هوازی سیلاژ‌ ذرت تلقیح شده با جدایه‌های جدید باکتری اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف. سامانه مدیریت نشریات علمی, 14(3), 359-377. doi: 10.22067/ijasr.2021.68168.1003
ناهید آقامحمدی; فردین هژبری; داریوش علی پور. "پایداری هوازی سیلاژ‌ ذرت تلقیح شده با جدایه‌های جدید باکتری اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف". سامانه مدیریت نشریات علمی, 14, 3, 1401, 359-377. doi: 10.22067/ijasr.2021.68168.1003
آقامحمدی, ناهید, هژبری, فردین, علی پور, داریوش. (1401). 'پایداری هوازی سیلاژ‌ ذرت تلقیح شده با جدایه‌های جدید باکتری اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف', سامانه مدیریت نشریات علمی, 14(3), pp. 359-377. doi: 10.22067/ijasr.2021.68168.1003
آقامحمدی, ناهید, هژبری, فردین, علی پور, داریوش. پایداری هوازی سیلاژ‌ ذرت تلقیح شده با جدایه‌های جدید باکتری اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1401; 14(3): 359-377. doi: 10.22067/ijasr.2021.68168.1003

پایداری هوازی سیلاژ‌ ذرت تلقیح شده با جدایه‌های جدید باکتری اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف

پژوهشهای علوم دامی ایران
مقاله 5، دوره 14، شماره 3 - شماره پیاپی 51، مهر 1401، صفحه 359-377    اصل مقاله (1.39 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.2021.68168.1003
نویسندگان
ناهید آقامحمدی1؛ فردین هژبری* 1؛ داریوش علی پور2
1گروه علوم دامی، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
2گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
چکیده
پایداری هوازی از ویژگی‌های مهم در ارزیابی کیفیت سیلاژ ذرت است. هدف از مطالعه حاضر، انتخاب جدایه­های باکتری‌ اسید‌ لاکتیک جدا شده از منابع مختلف با قابلیت بهبود ویژگی‌های تخمیری و ارزیابی اثر تلقیح این جدایه‌ها بر پایداری هوازی سیلاژ ذرت و جلوگیری از رشد ریزجانداران بیماری‌زا و فاسدکننده سیلاژ طی قرار گرفتن در معرض هوا بود. جدایه­های باکتری‌ ‌اسیدلاکتیک جدا شده از منابع مختلف، برای ارزیابی تولید متابولیت‌ها، کاهش pH و فعالیت ضد‌میکروبی در عصاره آبی به‌دست آمده از علوفه ذرت تلقیح شدند. 121 جدایه از منابع مختلف در آزمایشگاه جدا شد، تجزیه و تحلیل توالی 16S ریبوزومی DNA، جدایه­های نماینده برای تأیید حضور گروه­های غالب استفاده شد. توالی جدایه‌های مختلف باکتری­های لاکتیک اسید، درجه شباهت بالایی به جدایه­های نوع بانک ژن با شباهت 99 و 100 درصد نشان دادند. پنج جدایه باکتری‌های ‌اسیدلاکتیک که بهترین نتایج را نشان دادند، به علوفه ذرت تلقیح و 105 روز در سیلوهای آزمایشی سیلو شدند، سپس، طی هشت روز تحت آزمایش پایداری هوازی قرار گرفتند. نمونه‌های سیلاژ در صفر، چهار و هشت روز پس از قرار گرفتن در معرض هوا برای تعیین تغییرات در ترکیبات شیمیایی، فرآورده‌های تخمیر و ارزیابی تغییرات میکروبی برای تعیین فساد هوازی جمع‌آوری شدند. نتایج نشان داد، که همه‌ سیلاژها دارای تخمیر خوب با مقدار pH پایین (کمتر از80/3) و غلظت کم اتانول هستند. پایداری هوازی سیلاژ ذرت با بالا بودن اسید ‌استیک و کاهش جمعیت مخمرها همراه بود. تمام جدایه‌ها باعث افزایش پایداری هوازی سیلاژ ذرت شدند. این نتایج مزیت تلقیح میکروبی را اثبات کرد. بهترین جدایه‌ی آزمایشی، لاکتوباسیلوس فرمنتوم بود، زیرا باعث pH پایدارتر و تولید بیشتر اسید استیک، کاهش بالاتری از جمعیت مخمرها در سیلاژ ذرت تلقیح شده با این جدایه‌ی باکتری شد و بدین ترتیب فساد هوازی کاهش یافت.
کلیدواژه‌ها
پایداری هوازی؛ فساد هوازی؛ قارچ‌های رشته‌ای؛ محصولات تخمیر؛ مخمرها
مراجع
  1. Addah, W., Baah, J., Groenewegen, P., Okine, E. K., & McAllister, T. A. (2011). Comparison of the fermentation characteristics, aerobic stability and nutritive value of barley and corn silages ensiled with or without a mixed bacterial inoculant. Canadian Journal of Animal Science, 91, 133–146. https://doi.org/4141/CJAS10071
  2. AOAC. (1990). Official Methods of Analysis. Vol. 1. 15th Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC.
  3. Assis, F. G. V., Avila, C. L. S., Pinto, J. C. & Schwan, R. F. (2014). New inoculants on maize silage fermentation, Revista Brasileira de Zootecnia, 43(8), 395-403. https://doi.org/1590/S1516-35982014000800001 
  4. Avila, C. L. S., Pinto, J. C., Figueiredo, H. C. P., & Schwan, R. F. (2009). Effects of an indigenous and a commercial Lactobacillus buchneri strain on quality of sugar cane silage. Grass and Forage Science, 64, 384–394. https://doi.org/1111/j.1365-2494.2009.00703.x
  5. Avila, C. L. S., Valeriano, A. R., Pinto, J. C., Figueiredo, H. C. P., Rezende, A.V., & Schwan, R. F. (2010). Chemical and microbiological characteristics of sugarcane silages treated with microbial inoculants. Brazilian Journal of Animal Science, 39, 25–32. https://doi.org/1590/S1516-35982010000100004
  6. Avila, C. L. S., Pinto, J. C., Oliveira D. P., & Schwan, R. F. (2012). Aerobic stability of sugar cane silages with a novel strain of Lactobacillus sp. isolated from sugar cane. Brazilian Journal of Animal Science, 41, 249–255. https://doi.org/1590/S1516-35982012000200003
  7. Avila, C. L. S., Carvalho, B. F., Pinto, J. C., Duarte W. F., & Schwan, R. F. (2014). Use of Lactobacillus hilgardii strains for enhancing quality of sugarcane silage. Journal of Dairy Science, 97, 940–951. https://doi.org/3168/jds.2013-6987
  8. Basso, F. C., Bernardes, T. F., Roth, A. P. T. P., Lodo, B. N., Berchielli, T. T., & Reis, R. A. (2012). Fermentation and aerobic stability of corn silage inoculated with Lactobacillus buchneri. Revista Brasileira de Zootecnia, 41 (7), 1789-1794. https://doi.org/1590/S1516-35982012000700032
  9. Carvalho, B. F., Avila, C. L. S., Miguel, M. G. C. P., Pinto, J. C., Santos, M. C., & Schwan, R. F. (2014). Aerobic stability of sugar-cane silage inoculated with tropical strains of lactic acid bacteria.Grass and Forage Science, 70, 308-323. https://doi.org/1111/gfs.12117
  10. Chen, L., Yuan, X. J., Li, J. F., Wang, S. R., Dong, Z. H., & Shao, T. (2017). Effect of lactic acid bacteria and propionic acid on conservation characteristics, aerobic stability and in vitro gas production kinetics and digestibility of whole-crop corn based total mixed ration silage. Journal of Integrative Agriculture, 15(7), 1592–1600. https://doi.org/1016/S2095-3119(16)61482-X
  11. Silva, T. C., Silva, L. D., Santos, E. M., & Oliveira, J. S. (2017). Importance of the fermentation to produce high-quality silage. pp. 1-22 in Fermentation Processes Croatia. A. Jozala, ed. IntechOpen.
  12. Deraize, R. E. (1961). Routine analysis of carbohydrate and lignin in herbage. Journal of the Science of Food and Agriculture, 12, 152-159. https://doi.org/1002/jsfa.2740120210
  13. Fabiszewska, A. G., Zielinska, K. J., & Wrobel, B. (2019). Trends in designing microbial silage quality by biotechnological methods using lactic acid bacteria inoculants: A minireview. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 35(76), 1-8. https://doi.org/1007/s11274-019-2649-2
  14. Jatkauskas, J., Vrotniakiene, V., & Stoskus, R. (2018). Variations in fermentation, bacterial population and aerobic stability in maize silage. Zemdirbyste-Agriculture, 105(4), 377–382. https://doi.org/13080/z-a.2018.105.048
  15. Kung, L., and R. Shaver. 2001. Interpretation and use of silage fermentation analysis reports. Focus on Forage, 3: 1–5. https://fyi.extension.wisc.edu/forage/interpretation-and-use-of-silage-fermentation-analysis-reports.
  16. Kung, L., Shaver, R. D., Grant, R. J., & Schmidt, R. J. (2018). Silage review: Interpretation of chemical, microbial, and organoleptic components of silages. Journal of Dairy Science, 101, 4020–4033. https://doi.org/3168/jds.2017-13909
  17. Lee, S. S., Lee, H. J., Paradhipta, D. H. V., Joo, Y. H., Kim, S. B., Kim, D. H., & Kim, S. C. (2019). Temperature and microbial changes of corn silage during aerobic exposure. Asian-Australasian Journal of Animal Science, 32, 988–995. https://doi.org/5713/ajas.18.0566
  18. Nkosi, B. D., Meeske, R., Langa, T., & Thomas, R. S. (2011). Effects of bacterial silage inoculants on whole-crop maize silage fermentation and silage digestibility in rams. South African Journal of Animal Science, 41, 350–359. https://doi.org/4314/sajas.v41i4.5
  19. Oude Elferink, S. J. W. H., Krooneman, J., Gottschal, J. C., Spoelstra, S. F., Faber, F., & Driehuis, F. (2001). Anaerobic conversion of lactic acid to acetic acid and 1, 2-propanediol by Lactobacillus buchneri. Applied and Environmental Microbiology, 67, 125–132. https://doi.org/1128/AEM.67.1.125-132.2001
  20. Pang, H., Zhang, M., Qin, G., Tan, Z., Li, Z., Wang, Y., & Cai, Y. (2011). Identification of lactic acid bacteria isolated from corn stovers. Animal Science Journal, 82, 642–653. https://doi.org/1111/j.1740-0929.2011.00894.x
  21. Ranjit, N. K., & Kung, L. (2000). The effect of Lactobacillus buchneri, Lactobacillus plantarum, or a chemical preservative on the fermentation and aerobic stability of corn silage. Journal of Dairy Science, 83, 526–535. https://doi.org/3168/jds.S0022-0302(00)74912-5
  22. Saarisalo, E., Skytta, E., Haikara, A., Jalava, T., & Jaakkola, S. (2007). Screening and selection of lactic acid bacteria strains suitable for ensiling grass. Applied and Environmental Microbiology, 102, 327–336. https://doi.org/1111/j.1365-2672.2006.03103.x
  23. Santos, A. O., Avila, C. L. S., & Schwan, R. F. (2013). Selection of tropical lactic acid bacteria for enhancing the quality of maize silage. Journal of Dairy Science, 96, 7777–7789. https://doi.org/3168/jds.2013-6782
  24. Santos2016, A. O., Avila, C. L. S., Pinto, J. C., Carvalho, B. F.Dias, D. R., & Schwan, R. F. (2016). Fermentative profile and bacterial diversity of corn silages inoculated with new tropical lactic acid bacteria. Journal of Applied Microbiology, 120, 266–279. https://doi.org/1111/jam.12980
  25. SAS 2013. SAS User’s Guide. Version 9.4. SAS Inst. Inc.,Cary , NC.
  26. Silva, L. D., Pereira, O. G., Silva, T. C., Leandro, E. S., Paula, R. A., Santos, S. A., Ribeiro, K. G., & Valadares Filho, S. C. (2018). Effects of Lactobacillus buchneri isolated from tropical maize silage on fermentation and aerobic stability of maize and sugarcane silages. Grass and Forage Science, 73, 660–670. https://doi.org/1111/gfs.12360
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,229
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 996


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب