اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات52
تعداد شماره‌ها2,091
تعداد مقالات21,679
تعداد مشاهده مقاله79,684,000
تعداد دریافت فایل اصل مقاله25,526,996
نبی زاده, اسمعیل, حق شناس, مسعود, احمدی, خدیجه. (1402). بررسی اثر قارچ میکوریزا (Piriformospora indica) بر صفات مورفولوژیکی، فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana) تحت تنش خشکی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 37(2), 453-465. doi: 10.22067/jhs.2022.75337.1173
اسمعیل نبی زاده; مسعود حق شناس; خدیجه احمدی. "بررسی اثر قارچ میکوریزا (Piriformospora indica) بر صفات مورفولوژیکی، فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana) تحت تنش خشکی". سامانه مدیریت نشریات علمی, 37, 2, 1402, 453-465. doi: 10.22067/jhs.2022.75337.1173
نبی زاده, اسمعیل, حق شناس, مسعود, احمدی, خدیجه. (1402). 'بررسی اثر قارچ میکوریزا (Piriformospora indica) بر صفات مورفولوژیکی، فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana) تحت تنش خشکی', سامانه مدیریت نشریات علمی, 37(2), pp. 453-465. doi: 10.22067/jhs.2022.75337.1173
نبی زاده, اسمعیل, حق شناس, مسعود, احمدی, خدیجه. بررسی اثر قارچ میکوریزا (Piriformospora indica) بر صفات مورفولوژیکی، فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana) تحت تنش خشکی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1402; 37(2): 453-465. doi: 10.22067/jhs.2022.75337.1173

بررسی اثر قارچ میکوریزا (Piriformospora indica) بر صفات مورفولوژیکی، فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana) تحت تنش خشکی

علوم باغبانی
مقاله 12، دوره 37، شماره 2 - شماره پیاپی 58، مرداد 1402، صفحه 453-465    اصل مقاله (980.84 K)
نوع مقاله: مقالات پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhs.2022.75337.1173
نویسندگان
اسمعیل نبی زاده* 1؛ مسعود حق شناس2؛ خدیجه احمدی3
1دانشگاه آزاد اسلامی مهاباد، مهاباد، ایران
2دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
3دانشگاه شاهد، تهران، ایران
چکیده
گیاه دارویی استویا از خانواده Asteraceae، حاوی ترکیبات طبیعی، به ویژه استویوزید و ریبائودیوزید A است که تخمین زده می­شود 150 تا 400 برابر شیرین­تر از ساکاروز باشد. به­منظور بررسی اثر قارچ اندوفیت Piriformospora indica در شرایط تنش آبی بر خصوصیات رویشی، پارامترهای فیزیولوژیکی و عناصر ریزمغذی گیاه دارویی استویا، آزمایشی به­صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در چهار تکرار در سال 97-1396 اجرا شد. عامل اول تنش خشکی در چهار سطح (25، 45، 60 و 80 درصد ظرفیت مزرعه) و عامل دوم تلقیح نشاء با قارچ در دو سطح (عدم تلقیح و تلقیح باP. indica) بودند. صفات مورد مطالعه شامل کولونیزاسیون ریشه، وزن خشک، تعداد برگ، ارتفاع بوته، قطر ساقه، کلروفیل a، b، کلروفیل کل، کاروتنوئید، پرولین، قندهای محلول، قدرت آنتی­اکسیدانی و عناصر ریزمغذی شامل مس، آهن، روی و منگنز بودند. نتایج نشان داد که صفات مورد ارزیابی در پژوهش حاضر تحت تأثیر تیمارهای اصلی قارچ و تنش خشکی قرار گرفتند. نهال­هایی که با قارچ اندوفیت P. indica تلقیح شده دارای بیش­ترین درصد کولونیزاسیون ریشه، پارامترهای رشد، محتوای رنگیزه­های فتوسنتزی، ترکیبات محلول و عناصر ریزمغذی نسبت به عدم تلقیح بودند. تنش خشکی موجب افزایش قندهای محلول، میزان پرولین و قدرت آنتی­اکسیدانی برگ گیاه دارویی استویا شد و با افزایش تنش خشکی از 80 درصد ظرفیت زراعی به 25 درصد باعث کاهش مابقی صفات شد. طبق نتایج مقایسه میانگین اثر برهمکنش قارچ در تنش خشکی، بیش­ترین میزان کولونیزاسیون ریشه، قطر ساقه  و محتوای کاروتنوئید در تلقیح گیاه با قارچ P. indica و تنش 25 درصد و قدرت آنتی­اکسیدانی در تنش 80 درصد مشاهده شد. باتوجه به نتایج تحقیق حاضر استفاده از قارچ P. indica بیش­ترین تأثیر مثبت بر خصوصیات کمی و کیفی گیاه دارویی استویا نسبت به عدم تلقیح قارچ برخوردار بود.
کلیدواژه‌ها
آنتی‌اکسیدان؛ استویا؛ عناصر غذایی؛ کم آبی؛ کلونیزاسیون
مراجع
  1. Abdollahi, , Ali Asgharzad, N., Zahtab Selmasi, S., & Khoshru, B. (2019). Effects of endophytic fungus piriformospora indica on growth indices and nutrient uptake by anise plant (Pimpinella anisum) under water deficit stress conditions. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 29(4), 51-64.
  2. Arabzadeh, N. (2012). The effect of drought stress on soluble carbohydrates (sugars) in two species of Haloxylon persicum and Haloxylon aphyllum. Asian Journal of Plant Sciences, 11, 44-51. https://doi.org/10.3923/ajps.2012.44.51
  3. Baligar, V.C., Fageria, N.K., & He, Z.L. (2001). Nutrient use efficiency in plants. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 32, 921-950.
  4. Bates, S., Waldern, R.P., & Teave, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. https://doi.org/10.1007/BF00018060
  5. Benzie, F.F., & Strain, J.J. (1996). ̍The Ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of ‘antioxidant power: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239, 70–76. https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292
  6. Bhuyan, K., Bandyopadhyay, P., Kumar, P., Mishra, D.K., Prasad, R., Kumari, A., & Yadava, P.K. (2015). Interaction of Piriformospora indica with Azotobacter chroococcum. Scientific Reports, 5, 13911. https://doi.org/10.1038/srep13911
  7. Brodersen, R., Roddy, A.B., Wason, J.W., & McElrone, A.J. (2019). Functional status of xylem through time. Annual Review Plant Biology, 70, 407–433. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-050718-100455
  8. Cheng, Q., Zou, Y.N., Wu, Q.S., & Kuča, K. (2021). Arbuscular mycorrhizal fungi alleviate drought stress in trifoliate orange by regulating H+-ATPase activity and gene expression. Frontiers in Plant Science, 12, 659-694. https://doi.org/10.1016/10.3389/fpls.2021.659694
  9. Costache, A., Campeanu, G., & Neata, G. (2012). Studies concerning the extraction of chlorophyll and total carotenoids from vegetables. Romanian Biotechnological Letters, 17(5), 7702-7708.
  10. Devincentis, J. (2020). Scales of sustainable agricultural water management. Ph.D. Thesis, University of California, Davis, CA, USA.
  11. Diatta, A., Fike, J.H., Battaglia, M.L., Galbraith, J., & Baig, M.B. (2020). Effects of biochar on soil fertility and crop productivity in arid regions: A review. Arabian Journal of Geosciences, 13, 595. https://doi.org/10.1007/s12517-020-05586-2
  12. DuBois, , Gilles, K.A., Hamilton, J.K., Rebers, P.A., & Smith, F. (1956). Colorimetric method for determination of sugars and related substances. American Chemical Society, 28(3), 350–356
  13. Eziz, A, Yan, Z, Tian, D, Han, W, Tang, Z., & Fang, J. (2017). Drought effect on plant biomass allocation: A meta-analysis. Ecology and Evolution, 7, 11002–11010. https://doi.org/10.1002/ece3.3630
  14. Gao, X., & He, X.L. (2007). Ecological study on am fungi around roots of medicinal plants in the middle area of Hebei province. Agricultural Research in the Arid Areas, 25(3), 196-202. https://doi.org/10.1016/S1872-2040(07)60079-6
  15. Giovannetti, M., & Mosse, B. (1980). An evaluation of techniques for measuring vesicular Arbuscular Mycorrhizal infection in roots. New Philologists, 84, 489-500. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1980.tb04556.x
  16. Gosal, S., Wani, S.H., & Kang, M.S. (2010). Biotechnology and crop improvement. Journal of Crop Improvement, 24(2), 153-217. https://doi.org/10.1080/15427520903584555
  17. Haghir Ebrahimabadi, A., Hatami, M., Karimzadeh Asl, K., & Ghorbanpour, M. (2018). Effect of mycorrhizal fungi and biophosphor fertilizer on growth features, yield and yield components, and essntial oil constituents in Cuminum cyminum Journal of Medicinal Plants, 17(66), 74-90. (In Persian with English abstract). https://doi.org/20.1001.1.2717204.2018.17.66.3.1
  18. Hajihashemi, , & Ehsanpour, A.A. (2014). Antioxidant response of Stevia rebaudiana B. to polyethylene glycol and paclobutrazol treatments under in vitro culture. Applied Biochemistry and Biotechnology, 172(8), 4038-4052. (In Persian with English abstract)
  19. Hamzei, , & Salimi, F. (2015). Root colonization, yield and yield components of milk thistle (Silybum marianum) affected by mycorhizal fungi and phosphorus fertilizer. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 24(4), 85-96.
  20. Hill, W., & Kafer, E. (2001). Improved protocols for Aspergillus minimal medium: trace element and minimal medium salt stock solutions. Fungal Genetics Reports, 48, 8. https://doi.org/10.4148/1941-4765.1173
  21. Lee, H., Kim, Y.S., & Lee, C.B. (2001). The inductive responses of the antioxidant enzymes by salt stress in rice (Oryza sativa L.). Jurnal Plant Physioloy, 158, 737–745. https://doi.org/10.1078/0176-1617-00174
  22. Lemus-Mondaca, R., Vega-Gálvez, A., Zura-Bravo, L., & Ah-Hen, K. (2012). Stevia rebaudiana Bertoni, source of a high-potency natural sweetener: A comprehensive review on the biochemical, Nutritional and Functional Aspects. Food Chemistry, 132(3), 1121-1132. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.11.140
  23. Ma, F., Yang, X.H., Li, P.M., & Tong, R.J. (2005). Investigation of the diversity of arbuscular mycorrhizal structure of medicinal plants in Chongqing. Journal of Southwest Agricultural University, 27(3), 406-409.
  24. Meng, L., He, J.D., Zou, Y.N., Wu, Q.S., & Kuča, K. (2020). Mycorrhiza-released glomalin-related soil protein fractions contribute to soil total nitrogen in trifoliate orange. Plant, Soil and Environment, 66, 183-189. https://doi.org/10.17221/100/2020-PSE
  25. OConnell, (2017). Towards adaptation of water resource systems to climatic and socio-economic Chang. Water Resources Management, 31, 2965–2984. https://doi.org/10.1007/s11269-017-1734-2
  26. Okorie, O., Mphambukeli, T.N., & Amusan, S.O. (2019). Exploring the political economy of water and food security nexus in BRICS. Africa Insight, 48, 21–38. https://hdl.handle.net/10520/EJC-15b208a68b
  27. Ortas, , Sari, N., Akpinar, C., & Yetisir, H. (2011). Screening mycorrhiza species for plant growth, P and Zn uptake in pepper seedling grown under greenhouse conditions. Scientia Horticulturae, 128, 92–98. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2010.12.014
  28. Phillips, M., & Hayman, D.S. (1970). Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55(1), 158-161. https://doi.org/10.1016/S0007-1536(70)80110-3
  29. Rathinasabapathi, (2000). Metabolic engineering for stress tolerance: Installing osmoprotectant synthesis pathways. Annals of Botany, 86, 709-716. https://doi.org/10.1006/anbo.2000.1254
  30. Sanayei, , Barmaki, M., Ebadi khazine Gadim, A., & Torabi Giglou, M. (2021). Effect of drought stress and inoculation of mycorrihizal fungi and Pseudomonas spp. on some morpho-physiological characteristics of roselle (Hibiscus sabdaeiffa L.). Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 30(2), 71-89.
  31. Sanmartín, , Garmendia, I., Romano, B., Díaz, M., Palop, J.A., & Goicoechea, N. (2014). Mycorrhizal inoculation affected growth, mineral composition, proteins and sugars in lettuces biofortified with organic or inorganic selenocompounds. Scientia Horticulturae, 180, 40–51. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2014.09.049
  32. Seyedmohammadi, , Barmaki, M., & Davari, M. (2019). Effect of mycorrhizal fungi on leaf yield, root colonization percentage and some features of Stevia rebaudiana root in a soilless culture system. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 29(2), 189-204.
  33. Sherameti, , Tripathi, S., Varma, A., & Oelmüller, R. (2008). The root-colonizing endophyte Pirifomospora indica confers drought tolerance in Arabidopsis by stimulating the expression of drought stress–related genes in leaves. Molecular Plant-Microbe Interactions, 21(6), 799-807. https://doi.org/10.1094/MPMI-21-6-0799
  34. Singh,, Sharma, J., Rexer, K.H., & Varma, A. (2000). Plant productivity determinants beyondminerals, water and light: Piriformospora indica – A revolutionary plant growth promoting fungus. Current Science, 79(11), 1548-1554.
  35. Sirrenberg, , Göbel, C., Grond, S., Czempinski, N., Ratzinger, A., Petr Karlovsky, P., Patricia Santos, P., Feussner, L., & Pawlowski, K. (2007). Piriformospora indicaaffects plant growth by auxin production. Physiology Plantarum, 131, 581-589. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.2007.00983.x
  36. Sun, , Johnson, J.M., Cai, D., Sherameti, I., Oelmüller, R., & Lou, B. (2010). Piriformospora indica confers drought tolerance in Chinese cabbage leaves by stimulating antioxidant enzymes, the expression of drought- related genes and the plastid-localized CAS protein. Journal of Plant Physiology, 167(12), 1009-1017. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2010.02.013
  37. Tebuqin Bao, Y.Y. (2015). Colonization characteristics of AMF in common mongolian medicinal plants of horqin sandy land. Inner Mongolia Agricultural Science and Technology, 43(6), 25-28. https://doi.org/10.3969/j.issn.1007-0907.2015.06.008
  38. Ucar, , Ozyigit, Y., & Turgut, K. (2016). The effects of light and temperature on germination of stevia (Stevia rebaudiana BERT.) seeds. Türkiye Tarımsal Araştırmalar Dergisi, 3(1), 37-40.
  39. Valinezhad, , Gholizadeh, A., Naeemi, M., Gholamalalipour Alamdari, E., & Zarei, M. (2019). Effects of vermicompost and mycorrhizal fungus on quantitative and qualitative traits of medicinal plant Stevia rebaudiana Bertoni. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research, 35(3), 484-500. (In Persian with English abstract). https://doi.org/10.22092/ijmapr.2019.123788.2417
  40. Varma,, Sheramati, I., & Tripathi, S. (2012).The symbiotic fungus Piriformospora indica. Review. In Hock B (eds). Fungal Associations. 2nd Ed. Berlin: Springer; pp. 231-154.
  41. Wu, S., Gao, W.Q., Srivastava, A.K., Zhang, F., & Zou, Y.N. (2020). Nutrient acquisition and fruit quality of Ponkan mandarin in response to AMF inoculation. Indian Journal of Agricultural Sciences, 90, 1563-1567.
  42. Xu, , Tan, X., & Wang, Z. (2010). Effects of sucrose on germination and seedling development of Brassica Napus. International Journal of Biology, 2, 150-154.
  43. Zare Hassanabadi, M Z., Dashti, M., & Akhondi, M. (2020). The effect of two species of Arbuscular mycorrhiza fungi on the activity of antioxidant enzymes and morphophysiological characteristics of Mentha pulegium in drought stress. Technology of Medicinal and Aromatic Plants of Iran, 2(2), 83-99. (In Persian with English abstract). https://doi.org/10.22092/MPT.2020.127803.1049
  44. Zhang, H., Sun, J.Q., & Bao, Y.Y. (2015). Advances in studies on plant secondary metabolites influenced by Arbuscular mycorrhizal Journal of Agricultural Biotechnology, 23(8), 1093-1103. https://doi.org/10.3969/j.issn.1674-7968.2015.08.013
  45. Zhang, , Proenca, R., & Maffei, M. (1994). Positional cloning of the mouse obese gene and its human homologue. Nature, 372, 425–432.
  46. Zhang, Z., Zhang, , & Huang, Y. (2014). Effects of Arbuscular mycorrhizal fungi on the drought tolerance of Cyclobalanopsis glauca seedlings under greenhouse conditions. New For, 45, 545–556.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 3,260
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 989


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب