اثر سه روز ذخیره سازی اسپرم پوشش دار شده در سرما و افزودن مایع منی بر باروری قوچ

پژوهشهای علوم دامی ایران

مقاله 1، دوره 8، شماره 1 - شماره پیاپی 25، فروردین 1395، صفحه 197-205   

نوع مقاله: علمی پژوهشی- فیزیولوژی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.v8i1.36450

نویسندگان

علیرضا وافری¹؛ محمد روستائی علی مهر^{* 1}؛ نوید قوی حسین زاده¹؛ فریدون طالبی²

¹گروه علوم دامی،دانشکده علوم کشاورزی دانشگاه گیلان، گیلان، ایران

²سازمان جهاد کشاورزی استان گیلان، گیلان، ایران

چکیده

هدف این مطالعه بررسی اثر افزودن مایع منی قوچ به اسپرم پوشش دار شده بعد از ذخیره سازی بود. اسپرم پوشش دار شده از چهار راس قوچ بالغ (3-5 ساله) در فصل تولید مثل جمع آوری شد. نمونه ها تجمیع و بعد به سه بخش مساوی تقسیم شدند. بعد از 68 ساعت نگهداری در C5 نمونه ها سانتریفیوژ شدند و بعد در نمونه های بخش اول (E-S+) مایع رو حذف شد و 10% مایع منی اضافه شد، در نمونه های بخش دوم (E-S-) مایع رو حذف شد و رقیق کننده تریس گلوکز اضافه شد و در نمونه های بخش سوم (شاهد، E+S-) رسوب با مایع رو مخلوط شد. بعد از چهار ساعت نگهداری در C 5، نمونه ها از طریق دهانه گردن رحم در میش های تالشی فحل (1-3 ساله)، تلقیح شدند . نتایج نشان داد نرخ بره‌زایی در میش ها شکم زایش دوم (91/18%) بیشتر ازمیش های شکم زایش اول (12/5%) بود. اگرچه نرخ بره زایی در تیمار E-S- (32/24%)حدود 10% از تیمار E+S- (81/10%) بیشتر بود ولی تفاوت معنی‌داری بین درصد نرخ بره زایی تیمار های E-S- و E+S-وجود نداشت. همچنین، تفاوت معنی‌داری بین درصد نرخ بره زایی تیمارهای E-S+ (4/5%) و E+S- وجود نداشت. نرخ بره زایی در تیمار E-S- به طور معنی داری بیشتر از تیمار E-S+ بود. بنابراین این تحقیق نشان داد که امکان افزودن مایع منی قوچ به اسپرم پوشش دار شده بعد از ذخیره سازی وجود ندارد.

کلیدواژه‌ها

اسپرم پوشش دار شده؛ باروری؛ ذخیره سازی منی؛ مایع منی

مراجع

1- Aboagla, E. M., and T. Terada. 2004. Effects of egg yolk during the freezing step of cryopreservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology, 62 (6): 1160-1172.

2- Anel, L., M. Kaabi., B. Abroug., M. Alvarez., E. Anel., J. C. Boixo., L. F. de la Fuente., and P. de Paz. 2005. Factors influencing the success of vaginal and laparoscopic artificial insemination in churra ewes: a field assay. Theriogenology, 63 (4):1235-1247.

3- Bergeron, A., M. Crete., Y. Brindle., and P. Manjunath. 2004. Low-density lipoprotein fraction from hen’s EY decreases the binding of the major proteins of bovine seminal plasma to sperm and prevents lipid efflux from the sperm membrane. Biology of Reproduction, 70 (3): 708–717.

4- Bocquier, F., M. Theriez., S. Prache., and A. Brelurut. 1988. Alimentation des ovins. In: Jarrige J, editor. limentation des bovins, ovins et caprins. Ed. 1, INRA, France, 1: 249–80.

5- De Pauw, I. M. C., D. M. Van Soom., S. Verberckmoes., and A. de Kruif. 2003. Effect of sperm coating on survical and penetrating ability of in vitro stored bovine spermatozoa. Theriogenology, 59 (5-6): 1109–1122.

6- Donovan, A., J.P. Hanrahan., E. Kummen., P. Duffy., and M. P. Boland. 2004. Fertility in the editor. limentation des bovins, ovins et caprins. Ed. 1, INRA, France, 1: 249–80.

7- El-Hajj Ghaoui, R., P. C. Thomson., T. Leahy., G. Evans., and W. M. C. Maxwell. 2007. Autologous whole ram seminal plasma and its vesicle-free fraction improve motility characteristics and membrane status but not in vivo fertility of frozen–thawed ram spermatozoa. Reproduction in Domestic Animals, 42 (5): 541–549.

8- Evans, G. 1991. Application of reproductive technology to the Australian livestock industries. Reproduction, fertility and development, 3 (6): 627–650.

9- Gil, J., M. Rodriguez-Irazoqui., L. Söderquist., and H. Rodriguez-Martinez. 2002. Influence of centrifugation or low extension rates prefreezing on the fertility of ram semen after cervical insemination. Theriogenology, 57 (7): 1781–1792.

10- Gomez-Fernandez, J., E. Gomez-Izquierdo., C. Tomas., A. Gonzalez-Bulnes., R. Sanchez-Sanchez., and E. de Mercado. 2012. Inclusion of seminal plasma in sperm cryopreservation of Iberian pig. Animal Reproduction Science, 130 (1-2): 82– 90.

11- Gordo, A. C., P. Rodrigues., M. Kurokawa., T. Jellerette., G. E. Exley., C. Warner., and R. Fissore. 2002. Intracellular calcium oscillations signal apoptosis rather than activation in vitro aged mouse eggs. Biology of Reproduction, 66 (6): 1828-37.

12- Graham, J. K. 1994. Effect of seminal plasma on the motility of the epididymal and ejaculated spermatozoa of the ram and bull during the cryopreservation process. Theriogenology, 41 (5): 1151–1162.

13- Kaabi, M., M. Alvarez., E. Anel., C. A. Chamorro., J. C. Boixo., P. de Paz., and L. Anel. 2006. Influence of breed and age on morphometry and depth of inseminating catheter penetration in the ewe cervix: a postmortem study. Theriogenology, 66 (8): 1876-1883.

14- Kirkwood, R. N., M. L. Vadnais., and M. Abad. 2008. Practical application of seminal plasma. Theriogenology, 70 (8): 1364–1367.

15- Krzyzosiak, J., P. Molan., and R. Vishwanath. 1999. Measurements of bovine sperm velocities under true anaerobic and aerobic conditions. Animal Reproduction Science, 55 (3-4): 163-73.

16- Leahy, T., J. I. Marti., N. Mendoza., R. Perez-Pe., T. Muiño-Blanco., J. A. Cebrian-Perez., G. Evans., and W. M. Maxwell. 2010. High pre-freezing dilution improves post-thaw function of ram spermatozoa. Animal Reproduction Science, 119 (1-2): 137-146.

17- Love C. C., T. L. Blanchard., D. D. Varner., S. P. Brinsko., J. Voge., S. Bliss., K. Sudderth., S. Teague., and K. LaCaze 2012. Effect of daily semen centrifugation and resuspension on the longevity of equine sperm quality following cooled storage. Theriogenology, 77 (9): 1911–1917.

18- Manjunath, P., V. Nauc., A. Bergeron., and M. Menard. 2002. Major proteins of bovine seminal plasma bind to the low-density lipoprotein fraction of hen's egg yolk. Biology of Reproduction, 67 (4): 1250-1258.

19- Maxwell, W. M. C., and L. A. Johnson. 1999. Physiology of spermatozoa at high dilution rates: the influence of seminal plasma. Theriogenology, 52 (8):1353-62.

20- Maxwell, W. M. C., and S. Salamon. 1993. Liquid storage of ram semen—a review. Reproduction, Fertility and Development, 5 (6): 613–38.

21- O’Meara, C. M., A. Donovan., J. P. Hanrahan., P. Duffy., S. Fair., A. C. O. Evans., and P. Lonergan. 2007. Resuspending ram spermatozoa in seminal plasma after cryopreservation does not improve pregnancy rate in cervically inseminated ewes. Theriogenology, 67 (7): 1262–1268.

22- Paulenz, H., T. Adnøy., T. Fossen., and L. Söderquist. 2008. Effect on field fertility of addition of gelatine, different dilution rates and storage times of cooled ram semen after vaginal insemination. Reproduction in Domestic Animals, 45 (4): 706-710.

23- Ritar, A. J., and S. Salamon, 1982. Effect of seminal plasma and its removal and of egg yolk in the diluent on the survival of fresh and frozen thawed spermatozoa of Angor goat. Australian Journal of Biological Sciences, 35 (3): 305–312.

24- Roostaei-Ali Mehr M., and F. Sharafi. 2013. The effect of seminal plasma on the quality of coated ram frozen-thawed spermatozoa. Iranian Journal of Veterinary Research, 14 (4): 305-312.

25- Shackell, G. H., B. Kyle., and R. P. Littlejohn. 1990. Factors influencing the success of a large scale artificial insemination synchronized oestrus. Animal Reproduction Science, 84 (4): 359-368.

26- Verstegen, J. P., K. Onclin., and M. Iguer-Ouada. 2005. Long-term motilityand fertility conservation of chilled canine semen using egg yolk added Tris-glucose extender: in vitro and in vivo studies. Theriogenology, 64 (3): 720 –33.

27- Yanagimachi, R. 1988. Mammalian fertilization. In: Knobil, E., Neil, J. (Eds.). Physiology of Reproduction. USA, New York, pp. 135-85.