مقایسه روش های جداسازی بیوفیلم های باکتریایی تشکیل شده بر سطوح لوله های انتقال آب و وسایل استفاده شده در شیردوشی در دامدارای ها

پژوهشهای علوم دامی ایران

مقاله 5، دوره 8، شماره 1 - شماره پیاپی 25، فروردین 1395، صفحه 18-25   

نوع مقاله: علمی پژوهشی - تغذیه نشخوارکنندگان

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.v8i1.25052

نویسندگان

ستاره نبی زاده^{* 1}؛ رضا ولی زاده²

¹پردیس بین الملل فردوسی

²گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران

چکیده

بیوفیلم های باکتریایی بسته به ترکیب و محل ایجاد می توانند سودمند یا زیان آور باشند. تشکیل آنها در لوله های انتقال آب و استفاده شده در شیردوشی در دامداری ها می تواند مشکلاتی را ایجاد نمایدو منبع بالقوه ای برای آلودگی باشد. در این تحقیق با توجه به توانایی تشکیل بیوفیلم توسط باکتری با سیلوس سوبتیلیس با برخورداری از خصوصیات ویژه انتخاب گردید. ابتدا امکان تشکیل بیوفیلم بر روی قطعات مختلف پلاستیک (پلی وینیل کلراید، پلی پروپیلن و پلی اتلین گیکول)، فلزآلومینیوم و شیشه در دمای 4،30،37 درجه سانتیگراد مورد مطالعه قرار گرفت. بر روی تمام سطوح مورد استفاده بیوفیلم با سیلوس سوبتیلیس تشکیل شد. و دمای بهینه تشکیل بیوفیلم آن 30 درجه سانتیگراد تعیین گردید. دو روش جداسازی بیوفیلم ها شامل زدودن با سوآپ و ورتکس بکار رفت و بازده هر روش محاسبه گردید. روش ورتکس بازده و کارایی بیشتری برای جداسازی سلولهای چسبیده و بیوفیلم-ها از سطوح مختلف داشت. شمارش تام پرگنه های حاصل از بیوفیلم مشخص کرد که احتمال چسبیدن باکتریها به سطوح پلاستیکی به خصوص پلی پروپیلن بیشترین و سطوح شیشه ای کمترین بود.در واقع چسبیدن سلول های باکتری با توجه به خاصیت فیزیکی سطوح به نسبت 2-2/1 برابر ممکن است متغیر باشد .نتایج این مطالعه می تواند به انتخاب لوله های مناسب برای انتقال مایعات بویژه آب و کاهش آلودگی در دامداری ها کمک کند.

کلیدواژه‌ها

باکتری با سیلوس سوبتیلیس؛ بیوفیلم؛ سوآپ؛ ورتکس

مراجع

1- Bailey, C.P., and A. Vonholy. 1993. Bacillus Spore Contamintion associated with commerical bread manufacture. Journal Food Microbiology, 10:287-294.

2- Bob, F.B. 1997.Text book of microbiology. 12 thed. Philadelphia USA. WB Saunder Company;p.631.

3- Costerton, J.W., Z. Lewandowski., D. E. Caldwell., and E. Korber. 1995. Microbial biofilm in the nature.Journal Microbiology, 49:711-745.

4- Duguid, I. G., E. Evans., M. R. Brown., and P. Gilbert. 1992. Effect of biofilm culture upom the susceptibility of staphyloccus epidermidis to tobramycim. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 30:803-810.

5- Lindsay, D., and A. Vonholy .1997. Evaluation of disloading methods for laboratory- grown bacterial biofilms. Journal Food Microbiology, 14:383-390.

6- Marshall, K. C., and G. W. Characklis. 1990. Biofilms a basis for an interd is ciplinary approach. In: Characklis, G.W. and K.C. Marshall editor. Biofilms.3 thed.USA.Wiley, P.3-15.

7- Mcfeters, G. A., K.C.Marshall., and W. G. Characklis. 1990. The microbial cell physiological ecology in biofilm systems. In : Characklis G.W. and K.C. Marshall editor. biofilms .3 the.USA.wiley, p.42-45.

8- Writanen, G., and T. Sandholm. 1993. Epifluorescence image analysis and cultiration of foodborne biofilme bacteria grown on stainless steel surface. Journal of Food Protection, 56:678-683.

9- Zheng, Z., and P. S. Stewart. 2002. Penetration of rifampin through staphylococcus epidermidis biofilms.Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 49:900-903.

10- Zottola, E. A. 1994.Microbial attachment and biofilm formation: a new problem in food industry. Journal Food Technology, 48:107-114.

11- Zulfiqar, A. M., A. Mubashir., M. Naseem khan., I. Lai., N. Hassan., and S. I. Kan. 2013. Biofilm formation and dispersal of staphylococcus aureus under the influence of oxacillin. Journal Microbial Pathogenesis, 62:66-72.