همبستگی کانونی صفات مورفولوژی و فیتوشیمیایی پنج رقم ارکیده فالانوپسیس

علوم باغبانی

مقاله 18، دوره 36، شماره 1 - شماره پیاپی 53، خرداد 1401، صفحه 259-269   

نوع مقاله: مقالات پژوهشی

شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/jhs.2021.69819.1042

نویسندگان

فاطمه بیدرنامنی^{* 1}؛ سید نجم الدین مرتضوی²؛ یعثوب شیری¹

¹پژوهشکده کشاورزی، پژوهشگاه زابل، دانشگاه زابل، زابل، ایران

²گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران

چکیده

ارکیده فالانوپسیس یکی از گونه­های زیبا و تجاری از خانواده ارکیده بوده و تحقیقات در زمینه خواص دارویی آن اندک است. این تحقیق با هدف ارزیابی همبستگی کانونی صفات ریخت­شناسی و فیتوشیمیایی پنج رقم ارکیده فالانوپسیس شامل ‘Dubrovnik’، ‘Memphis’، ‘Andorra’، ‘Bucharest’ و ‘Nottingham’ انجام شد. اندام­های برگ و ریشه حاصل از کشت بافت بذر 5 رقم ارکیده در محیط کشت Chen در پژوهشکده کشاورزی دانشگاه زابل در سال 1399 برداشت شد. فاکتورهای تعداد ریشه، طول ریشه، تعداد برگ و طول برگ اندازه­گیری شد. پس از تهیه عصاره اتانولی برگ و ریشه میزان فنول کل، فلاونوئید کل و فعالیت آنتی اکسیدانی و در نهایت همبستگی کانونی بین صفات مورفولوژی و فیتوشیمیایی محاسبه شد. نتایج نشان داد که دو متغیر کانونی اول معنی­دار می­باشد و متغیر سوم معنی­دار نشد. اولین متغیر کانونی دارای بیشترین مقدار ویژه 83/65 است و متغیر دوم و سوم کانونی به ترتیب دارای 59/4 و 10/0 مقادیر ویژه است. با توجه به نتایج این تحقیق، متغیر کانونی اول با بالاترین مقادیر ویژه، مربع همبستگی کانونی و بیشترین درصد تجمعی باید در تمام صفات ریخت‌شناسی و فیتوشیمیایی مورد بررسی قرار گیرد. متغیرهای کانونی معنی­دار در صفات ریخت شناسی، 94 درصد از واریانس کل متغیرهای فیزیولوژیک را برازش می­کند. در حالی که متغیرهای کانونی معنی­دار در صفات فیتوشیمیایی 100 درصد از واریانس صفات فیتوشیمیایی را برازش می­کند. با توجه به نتایج به دست آمده و درصد بالای برازش در صفات فیتوشیمیایی می­توان نتیجه گرفت صفات فیتوشیمیایی می­توانند با دقت بیشتری همبستگی بین صفات را بیان کنند. همچنین معنی­داری همبستگی کانونی بین دو گروه متغیر، ارتباط بین صفات فیتوشیمیایی و ریخت­شناسی پنج رقم ارکیده فالانوپسیس را نشان داد. به طورکلی آنالیز نتایج این تحقیق نشان داد ارقام ارکیده دارای ترکیبات فنلی و فلاونوئیدی بالایی بوده و بالاترین قدرت مهار رادیکال­های آزاد را در همبستگی کانونی داشته­اند، می­توان از آن­ها به عنوان دارو استفاده کرد.

کلیدواژه‌ها

خاصیت دارویی؛ فنول؛ متابولیت ثانویه؛ مورفولوژی

مراجع

1. Akbarian A., Rahim-malek M., Sabzalian M.R., and Saeidi G.H. 2017. Assessment of phytochemical, morphological and antioxidant variation of bilehar (Dorema aucheri) population cultivated in different environmental conditions. Journal of Medicinal Plants 16(62): 120-135. (In Persian with English abstract)
2. Barros L., Baptisia P., and Ferreira I.C.F.R. 2007. Effects of fruiting body maturity stage on antioxidant activity measured by several biochemical assays, Lactarius piperatus. Food and Chemical Toxicology 45(9):1731-1737. DOI: 10.1016/j.fct.2007.03.006.
3. Bhattacharjee B., Islam T., Rahman Z., and Islam S.M.S. 2015. Antimicrobial activity and phytochemical screening of whole plant extracts of Vanda tessellata(Roxb). Journal of Pharmaceutical Science 4: 72–83.
4. Bidarnamani F., Mortazai S.N., and Rahimi M. 2020. Study of correlation and cluster analysis of seed germination characteristic in 5 cultivars of phalaenopsis orchid in Chen medium. Flower and Ornamental Plants 4(2): 101-114. (In Persian with English abstract). DOI: 29252/flowerjournal.4.2.101.
5. Bijaya P. 2013. Medicinal orchids and their uses: Tissue culture a potential alternative for conservation. African Journal of Plant Science7: 448–467. DOI: 10.5897/AJPS2013.10.
6. Bursal E., and Koksal E. 2011. Evaluation of reducing power and radical scavenging of water and ethanol extracts from sumac (Rhus coriaria). Food Research International 44: 2217-2221.
7. Dai J., and Mumper R.J. 2010. Plant phenolics extraction, analysis and their antioxidant and anti-cancer properties. Molecules 15: 7313-52. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2010.11.001.
8. De La Torre B.G., and Albericio F. 2020. The pharmaceutical industry in 2019. An analysis of FDA drug approvals from the prespective of molecoles. Mulecules 25(745): 1-13. DOI: 10.3390/molecules25030745.
9. Dalara A., Guoa Y., Esimd N., Bengue A.S., and Konczak I. 2015. Health attributes of an endemic orchid from Eastern Anatolia, Dactylorhiza chuhensisRenz & Taub In vitro investigations. Journal of Herbal Medecine 5: 77–85. https://doi.org/10.1016/j.hermed.2015.02.001.
10. Do Q.D., Angkawijaya A.E., Tran-Nguyen P.L., Huynh L.H., Soetaredjo F.E., Ismadji S., and Ju Y.H. 2014. Effect of extraction solvent on total phenol content totla falvonoid content and antioxident activity of Limnophia aromatic. Journal of Food and Drug Analysis 22: 296-302. DOI: 10.1016/j.jfda.2013.11.001.
11. Eghlima G.H., Kheiry A., Sanikhani M., Hadian J., and Alaaei M. 2019. Assessment of genetic variation and grouping of licorice (Glycyrrhiza glabra) population using canonical discriminant analysis. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 35(4): 677-690. In Persian with English abstract. (In Persian with English abstract). DOI: 10.22092/ijmapr.2019.125045.2486.
12. Firouzkuhi F., Esmailzadeh Bahabadi S., Mohkami Z., and Yosefzaei F. 2018. The effects of different solvents on total phenolic, Flavonoid contents and antioxidant activity of different organs of momordica charantia, cultures in Sistan region. Journal of medicinal plants Ecophytochemistry 5(4):74-85. (In Persian with English abstract)
13. Ghanaksh A., and Kaushik P. 1999. Antibacterial effect of Aeridesmultiflora Roxb: A study in vitro. The Journal of Orchid Society of India 1: 65–68.
14. Islam M.S., Mehraj H., Roni M.Z.K., Shimasaki K., and Uddin A.F.M.J. 2013, Correlation between cane growth and flowering behavior of Dendrobiumorchid cultivars. Journal of Bangladesh Academy Science 37: 205–209. 
15. Jamshidi M. A., Ahmadi-Ashtiani H.R., Rezazadeh S.H., Fathiazad F., Mazandarani M.A., and Khaki A.R. 2010. Study on Phenolics and Antioxidant Activity of some Selected Plant of Mazandaran Province. Journal of Medicinal Plants (34): 177-82. (In Persian)
16. Kala S., and Senthilkumar S. 2010. Antimicrobial activity of Acanthephippi Acanthephippium bicolor Malaysian Journal of Microbiology 6(2): 140-148.
17. Ling L.F., and Subramaniam S. 2007. Biochemical analysis of phalaenopsis violacea Asian Journal of Biochemistry 2: 237-246. DOI: 10.3923/ajb.2007.237.246.
18. Minh T.N., Khangm D.T., Tuyen P.T., Minh L.T., Anh L.H., Quan N.V., Ha P.T.T., Quan N.T., Toan N.P., Elzaawely A.A., and Xuan T.D. 2016. Phenolic compounds and antioxidant activity of phalaenopsis orchid hybrids. Antioxidants 5(3): 31-42. DOI: 10.3390/antiox5030031.
19. Moin S., Sahaya B.S., Servin P.W., and Chitra B.D. 2012. Bioactive potential of Coelogyne stricta(D.Don) Schltr: An ornamental and medicinally important orchid. Journal of Pharmacological Research 5: 2191–2196.
20. Nile S.H., and Park S.W. 2013, Total phenolics, antioxidant and xanthine oxidase inhibitory activity of three colored onions (Allium cepa). Frontiers in Life Science 7: 224-228. https://doi.org/10.1080/21553769.2014.901926.
21. Pant B., Adhikari R., and Thapa S. 2014. Application of plant cell and tissue culture for the production of phytochemicals in medicinal plants. Application of Plant Cell and Tissue Culture 25-41. DOI: 10.1007/978-81-322-1774-9_3.
22. Pant B., Pradhan S., and Paudel M.R. Various culture techniques for the mass propagation of medicinal orchids from Nepal. Acta Horticulture 109-124. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2019.1262.16.
23. Paudel M.R., Joshi P.R., Chand K., Sah A.K., Acharya S., Pant B., and Pant B. 2020. Antioxident, anticancer and antimicrobial effects of in vitro developed protocorms of Dendrobium longicornu. Biotechnolgy Reports 28: 1-7. https://doi.org/10.1016/j.btre.2020.e00527.
24. Rao S.R., and Ravishankar G.A. 2002, Plant cell cultures: chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology advances 20(2): 101-53. DOI: 10.1016/s0734-9750(02)00007-1.
25. Riggs T.J. 1973. The use of canonical analysis for for selection within a cultivar of spring barley. Annals of Applied Biology 74(2): 249-258.
26. Rokaya M.B., Uprety Y., Poudele R.C., Timsina B., Münzbergová Z., Asselind H., Tiwari A., Shresthac S.S., and Sigdeli S.R. 2014. Traditional uses of medicinal plants in gastrointestinal disorders in Nepal. Journal of Ethnopharmacology158:221–229. doi: 10.1016/j.jep.2014.10.014.
27. Sharma R., Samant S., Sharma P., and Devi S. 2012. Evaluation of antioxidant activities of Withania somnifera leaves growing in natural habitats of Northwest Himalaya India. Journal of Medicinal Plants Research 6(5): 657-661. DOI: 10.5897/JMPR11.257.
28. Shokrpour M., Mohammadi S.A., Moghaddam M., Ziai S.A., and Javanshir A. 2008, Analysis of morphologic association, phytochemical and AFLP markers in milk thistle (Silybum marianum). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 24(3): 278-292. (In Persian with English Abstract)
29. Shokrollahi S.H., Heshmatii G.H., and Yosefzadeh H. 2018. Study the phenolic compounds and antioxidant activity of the extract lily (Lilium ledebouri) (Baker). Journal of Fasa University of Medical Sciences 8(2): 727-734. (In Persian with English Abstract)
30. Talle B., Darvish F., Mohammadi A., Abbaszadeh B., and Rohami M. 2012. Assessment of relationship between effective traits on yield and compounds of essential oil and morphological triats of Lemon Balm (Melissa officinalis) accessions using path analysis and canonical correlation. Journal of Basic and Applied Scientific Reseach 2(4): 3719-3723. https://doi.org/10.17485/ijst%2F2013%2Fv6i5%2F33244.
31. Yang H.S., Han D.K., Kim J.R., and Sim J.C. 2006. Effects of α-tocopherol on cadminum-induced toxicity in rat testis and spermatogenesis. Journal of Korean Medicinal Science 21(3): 445. doi: 10.3346/jkms.2006.21.3.445.
32. Yeater K.M., Bollero G.A., Bullock D.G., Rayburn A.L., and Rodriguez-Zas S. 2004. Assessment of genetic variation in hairy vetch using canonical discriminant analysis. Crop Science 44: 185-189. https://doi.org/10.2135/cropsci2004.1850.