اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات51
تعداد شماره‌ها2,028
تعداد مقالات21,110
تعداد مشاهده مقاله47,472,964
تعداد دریافت فایل اصل مقاله20,352,459
کارگر, فاروق, فیاض, نجیب الله, هادوی, آرش. (1403). اثر افزودن مخمر تجاری ساکارومایسس سرویزیه به جیره بلدرچین ژاپنی بر صفات عملکردی، برخی فراسنجه‌های سرم، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری‌های بیماری‌زای روده. سامانه مدیریت نشریات علمی, 16(1), 89-100. doi: 10.22067/ijasr.2023.82630.1148
فاروق کارگر; نجیب الله فیاض; آرش هادوی. "اثر افزودن مخمر تجاری ساکارومایسس سرویزیه به جیره بلدرچین ژاپنی بر صفات عملکردی، برخی فراسنجه‌های سرم، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری‌های بیماری‌زای روده". سامانه مدیریت نشریات علمی, 16, 1, 1403, 89-100. doi: 10.22067/ijasr.2023.82630.1148
کارگر, فاروق, فیاض, نجیب الله, هادوی, آرش. (1403). 'اثر افزودن مخمر تجاری ساکارومایسس سرویزیه به جیره بلدرچین ژاپنی بر صفات عملکردی، برخی فراسنجه‌های سرم، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری‌های بیماری‌زای روده', سامانه مدیریت نشریات علمی, 16(1), pp. 89-100. doi: 10.22067/ijasr.2023.82630.1148
کارگر, فاروق, فیاض, نجیب الله, هادوی, آرش. اثر افزودن مخمر تجاری ساکارومایسس سرویزیه به جیره بلدرچین ژاپنی بر صفات عملکردی، برخی فراسنجه‌های سرم، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری‌های بیماری‌زای روده. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1403; 16(1): 89-100. doi: 10.22067/ijasr.2023.82630.1148

اثر افزودن مخمر تجاری ساکارومایسس سرویزیه به جیره بلدرچین ژاپنی بر صفات عملکردی، برخی فراسنجه‌های سرم، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری‌های بیماری‌زای روده

پژوهشهای علوم دامی ایران
مقاله 7، دوره 16، شماره 1 - شماره پیاپی 57، فروردین 1403، صفحه 89-100    اصل مقاله (1.16 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22067/ijasr.2023.82630.1148
نویسندگان
فاروق کارگر1؛ نجیب الله فیاض* 2؛ آرش هادوی1
1گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
2گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لغمان، افغانستان
چکیده
این آزمایش به‌منظور بررسی افزودن مخمر تجاری (ساکارومایسس سرویزیه) بر عملکرد، برخی فراسنجه‌های سرمی، ریخت‌شناسی و جمعیت باکتری­های بیماری­زا در بلدرچین ژاپنی انجام شد. در این آزمایش 504 قطعه جوجه یک روزه بلدرچین به‌طور تصادفی به هفت تیمار و شش تکرار و 12 قطعه پرنده در هر تکرار تقسیم شدند. تیمارهای آزمایشی شامل: ۱- جیره کنترل (فاقد مخمر)، جیره­های آزمایشی 2 تا 7 به‌ترتیب ۲۵/۰، ۵/۰، 75/0، 1، 25/1 و ۵/۱ گرم در کیلوگرم دارای مخمر بود. به‌منظور اندازه‌گیری فراسنجه­های آنزیم­های کبدی، سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز و اینترلوکین 1 و 6 در سن 35 روزگی از هر تکرار دو قطعه پرنده جدا و از ورید بال خون‌گیری و سپس کشتار شدند. نتایج نشان داد که سطوح ۵/۰، 75/0، 1، 25/1 و ۵/۱ مخمر زنده ساکارومایسس سرویزیه باعث بهبود افزایش وزن و ضریب تبدیل خوراک، کاهش درصد چربی محوطه بطنی و افزایش اندازه تیموس، افزایش پروتئین کل و آلبومین در سرم، کاهش تری­گلیسرید و کلسترول سرم، افزایش سوپراکسید دیسموتاز و کاتالاز در سرم و همچنین کاهش اینترلوکین‌های 1 و 6 و همچنین فاکتور نکروزدهنده تومور آلفا شد. تعداد باکتری­های کلستریدیوم پرفرنجنس و ای-کلای به­طور معنی­داری در گروه­های تغذیه شده با تیمارهای 3، 4، 5، 6 و 7 در مقایسه با گروه شاهد کاهش یافت. بهترین سطح مورد استفاده چتیاسل در این آزمایش ۷۵/۰ کیلوگرم ارزیابی شد.
کلیدواژه‌ها
بلدرچین ژاپنی؛ ریخت‌شناسی روده؛ عملکرد؛ عوامل بیماری زا؛ فراسنجه‌های خونی؛ مخمر تجاری
مراجع
  1. Abd El-Wahab, A., Mahmoud, R., Marghani, B., & Gadallah, H. (2019). Effects of yeast addition to the diet of Japanese quails on growth performance, selected serum parameters and intestinal morphology as well as pathogens reduction. Pakistan Veterinary Journal, 40(2), 219-223.‏ 29261/pakvetj/2019.125
  2. Ai, Q., Xu, H., Mai, K., Xu, W., Wang, J., & Zhang, W. (2011). Effects of dietary supplementation of Bacillus subtilis and fructooligosaccharide on growth performance, survival, non-specific immune response and disease resistance of juvenile large yellow croaker, Larimichthys crocea. Aquaculture, 317(1-4), 155-161. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.04.036
  3. Al-Khalaifah, H. (2018). Benefits of probiotics and/or prebiotics for antibiotic-reduced poultry. Poultry science, 97(11), 3807-3815. https://doi.org/10.3382/ps/pey160
  4. Alizadeh, M., Rodriguez-Lecompte, J., Yitbarek, A., Sharif, S., Crow, G., & Slominski, B. (2016). Effect of yeast-derived products on systemic innate immune response of broiler chickens following a lipopolysaccharide challenge. Poultry Science, 95(10), 2266-2273. https://doi.org/10.3382/ps/pew154
  5. Aluwong, T., Kawu, M., Raji, M., Dzenda, T., Govwang, F., Sinkalu, V., & Ayo, J. (2013). Effect of yeast probiotic on growth, antioxidant enzyme activities and malondialdehyde concentration of broiler chickens. Antioxidants, 2(4), 326-339. https://doi.org/10.3390/antiox2040326
  6. Bengmark, S. (2002). Gut microbial ecology in critical illness: is there a role for prebiotics, probiotics, and synbiotics? Current Opinion in Critical Care, 8(2), 145-151.
  7. Bolacali, M., & İrak, K. (2017). Effect of dietary yeast autolysate on performance, slaughter, and carcass characteristics, as well as blood parameters, in quail of both genders. South African Journal of Animal Science, 47(4), 460-470. 4314/sajas.v47i4.5
  8. Borda-Molina, D., Seifert, J., & Camarinha-Silva, A. (2018). Current perspectives of the chicken gastrointestinal tract and its microbiome. Computational and Structural Biotechnology Journal, 16, 131-139. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2018.03.002
  9. Brown, M. (2011). Modes of action of probiotics: Recent developments. Journal of Animal and Veterinary Advances, 10(14), 1895-1900. 3923/javaa.2011.1895.1900
  10. Chattopadhyay, M. K. (2014). Use of antibiotics as feed additives: A burning question (Vol. 5, pp. 334): Frontiers Media SA. https://doi.org/10.3389/fmicb.2014.00334
  11. Council, N. R. (1994). Nutrient requirements of poultry: 1994. National Academies Press.page (43-50)
  12. Duarte, K., Gomes, L. H., Sampaio, A., Issakowicz, J., Rocha, F., Granato, T. P., & Terra, S. R. (2012). Saccharomyces cerevisiae used as probiotic: Strains characterization and cell viability. IOSR, 1, 17-19. ISSN: 2319-2380, Volume 1, Issue 2 (Sep-Oct. 2012), PP 17-19
  13. Elghandour, M., Tan, Z., Abu Hafsa, S., Adegbeye, M., Greiner, R., Ugbogu, E., & Salem, A. (2020). Saccharomyces cerevisiae as a probiotic feed additive to non and pseudo‐ruminant feeding: a review. Journal of Applied Microbiology, 128(3), 658-674. https://doi.org/10.1111/jam.14416
  14. Gao, J., Zhang, H., Yu, S., Wu, S., Yoon, I., Quigley, J., & Qi, G. (2008). Effects of yeast culture in broiler diets on performance and immunomodulatory functions. Poultry Science, 87(7), 1377-1384. https://doi.org/10.3382/ps.2007-00418
  15. Ghosh, T., Haldar, S., Bedford, M., Muthusami, N., & Samanta, I. (2012). Assessment of yeast cell wall as replacements for antibiotic growth promoters in broiler diets: Effects on performance, intestinal histo‐morphology and humoral immune responses. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 96(2), 275-284. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2011.01155.x
  16. Hofacre, C., Mathis, G., & Quiroz, M. (2005). Natural alternatives to prevent necrotic enteritis. Poultry. Prod, 13, 7-9.
  17. Iji, P. A., Saki, A. A., & Tivey, D. R. (2001). Intestinal structure and function of broiler chickens on diets supplemented with a mannan oligosaccharide. Journal of the Science of Food and Agriculture, 81(12), 1186-1192. https://doi.org/10.1002/jsfa.925
  18. Marković, R., Šefer, D., Krstić, M., & Petrujkić, B. (2009). Effect of different growth promoters on broiler performance and gut morphology. Archivos de Medicina Veterinaria, 41(2), 163-169.‏ 4067/S0301-732X2009000200010
  19. Mehdi, Y., Létourneau-Montminy, M. P., Gaucher, M. L., Chorfi, Y., Suresh, G., Rouissi, T.,& Godbout, S. (2018). Use of antibiotics in broiler production: Global impacts and alternatives. Animal Nutrition, 4(2), 170-178. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2018.03.002
  20. Miles, R., Butcher, G., Henry, P., & Littell, R. (2006). Effect of antibiotic growth promoters on broiler performance, intestinal growth parameters, and quantitative morphology. Poultry Science, 85(3), 476-485. https://doi.org/10.1093/ps/85.3.476
  21. Morales-López, R., Auclair, E., Garcia, F., Esteve-Garcia, E., & Brufau, J. (2009). Use of yeast cell walls; β-1, 3/1, 6-glucans; and mannoproteins in broiler chicken diets. Poultry Science, 88(3), 601-607. https://doi.org/10.3382/ps.2008-00298
  22. Ogbuewu, I., koro, V., Mbajiorgu, E., & Mbajiorgu, C. (2019). Yeast (Saccharomyces cerevisiae) and its effect on production indices of livestock and poultry—A review. Comparative Clinical Pathology, 28, 669-677. https://doi.org/10.1007/s00580-018-2862-7
  23. Ognik, K., & Krauze, M. (2012). Dietary supplementation of mannanoligosaccharides to turkey hens on their growth performance and antioxidant status in the blood. South African Journal of Animal Science, 42(4), 380-388. 4314/sajas.v42i4.6
  24. Pourabedin, M., Xu, Z., Baurhoo, B., Chevaux, E., & Zhao, X. (2014). Effects of mannan oligosaccharide and virginiamycin on the cecal microbial community and intestinal morphology of chickens raised under suboptimal conditions. Canadian Journal of Microbiology, 60(5), 255-266. https://doi.org/10.1139/cjm-2013-0899
  25. Rahimi, S., Grimes, J., Fletcher, O., Oviedo, E., & Sheldon, B. (2009). Effect of a direct-fed microbial (Primalac) on structure and ultrastructure of small intestine in turkey poults. Poultry Science, 88(3), 491-503. https://doi.org/10.3382/ps.2008-00272
  26. Ronquillo, M. G., & Hernandez, J. C. A. (2017). Antibiotic and synthetic growth promoters in animal diets: Review of impact and analytical methods. Food Control, 72, 255-267. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2016.03.001
  27. Sakamoto, K., Hirose, H., Onizuka, A., Hayashi, M., Futamura, N., Kawamura, Y., & Ezaki, T. (2000). Quantitative study of changes in intestinal morphology and mucus gel on total parenteral nutrition in rats. Journal of Surgical Research, 94(2), 99-106. https://doi.org/10.1006/jsre.2000.5937
  28. Smith, S., Wang, J., Fanning, S., & McMahon, B. J. (2014). Antimicrobial resistant bacteria in wild mammals and birds: A coincidence or cause for concern? Irish Veterinary Journal, 67(1), 1-3. doi:10.1186/2046-0481-67-8
  29. Sohail, M., Rahman, Z., Ijaz, A., Yousaf, M., Ashraf, K., Yaqub, T., & Rehman, H. (2011). Single or combined effects of mannan-oligosaccharides and probiotic supplements on the total oxidants, total antioxidants, enzymatic antioxidants, liver enzymes, and serum trace minerals in cyclic heat-stressed broilers. Poultry Science, 90(11), 2573-2577. https://doi.org/10.3382/ps.2011-01502
  30. Tomaszewska, E., Dobrowolski, P., Muszyński, S., Kwiecień, M., Kasperek, K., Knaga, S., & Grela, E. (2018). Intestinal mucosa develops in a sex-dependent manner in Japanese quail (Coturnix japonica) fed Saccharomyces cerevisiae. British Poultry Science, 59(6), 689-697. https://doi.org/10.1080/00071668.2018.1523536
  31. Yalçın, S., Eser, H., Cengiz, S., & Eltan, Ö. (2013). Effects of dietary yeast autolysate (Saccharomyces cerevisiae) on performance, carcass and gut characteristics, blood profile, and antibody production to sheep red blood cells in broilers. Journal of Applied Poultry Research, 22(1), 55-61. https://doi.org/10.3382/japr.2012-00577
  32. Zhang, A., Lee, B., Lee, S., Lee, K., An, G., Song, K., & Lee, C. (2005). Effects of yeast (Saccharomyces cerevisiae) cell components on growth performance, meat quality, and ileal mucosa development of broiler chicks. Poultry Science, 84(7), 1015-1021. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.04.036
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,014
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 399


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب